Principes fondamentaux de la qPCR

28 novembre 2025

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Synthèse rapide

  • La réaction de PCR permet d’amplifier spécifiquement une séquence d’ADN.
  • La qPCR (PCR en temps réel) utilise la fluorescence pour quantifier en continu.
  • La loi exponentielle régit l’amplification des molécules d’ADN.
  • La courbe de fusion permet d’analyser la spécificité et détecter les mutations.
  • La quantification relative repose sur la méthode Livak, sous condition d’efficacité équivalente des amorces.
  • La normalisation permet de corriger les biais techniques avec une référence.
  • La température de fusion (Tm) est déterminée par la variation d’absorbance à 260 nm.
  • La dissociation des brins d’ADN se fait par dénaturation, généralement lors de la PCR ou analyse post-PCR.
  • La détection de contaminations ou dimères est essentielle pour la fiabilité des résultats.
  • La méthode spectrophotométrique est utilisée pour mesurer la concentration et la pureté d’acides nucléiques.

Concepts et définitions

  • Expression caractéristique des gènes de référence : constitue l’état constitutif d’un gène utilisé pour la normalisation.
  • Calibrateur : échantillon de référence en qPCR.
  • Normailisation : correction des données par un gène de référence.
  • Amplicon : produit d’une réaction de PCR.
  • Dénaturation : séparation des brins d’ADN par chaleur ou pH.
  • Hybridation : association complémentaire de deux brins d’ADN ou d’ARN.
  • Tm : température de fusion de l’ADN.
  • Mutations : modifications dans la séquence d’ADN détectables par la courbe de fusion.
  • Oligonucléotides : courtes séquences synthétiques d’ADN ou d’ARN.
  • Intron : séquence non codante dans un gène.
  • Transcrits : ARN synthétisé à partir de l’ADN.
  • Les formes : duplex, dimères, amplicons.

Formules, lois, principes

  • La loi d’amplification : formation exponentielle des molécules d’ADN, sauf déviation due à l’efficacité.
  • Efficacité de la PCR : calculée via la pente de la courbe standard, formule $$ E = 10^{(-1/pente)} - 1 $$.
  • La méthode Livak : $$ \Delta\Delta Cq = (Cq_{GOI} - Cq_{Réf}){échantillon} - (Cq{GOI} - Cq_{Réf})_{calibrateur} $$, valable si E GOI ≈ E REF.

Méthodes et procédures

  1. Préparer le mélange réactionnel comprenant amorces, ADN, tampon.
  2. Effectuer une étape de dénaturation initiale.
  3. Cycler (denaturation, hybridation, extension) 25-35 cycles.
  4. Déterminer les valeurs de Cq par la fluorescence.
  5. Réaliser la courbe de fusion pour vérifier la spécificité.
  6. Normaliser les résultats avec un gène de référence.
  7. Calculer l’expression relative selon la méthode Livak ou une autre méthode adaptée.
  8. Vérifier l’absence de dimères ou contamination.

Exemples illustratifs

  • Utilisation de SYBR Green pour quantifier un gène d’intérêt en comparant avec un gène de référence.
  • Détection de mutations par analyse de la courbe de fusion, repérant un Tm différent.
  • Normalisation de l’expression d’un gène lors d’une étude de sur ou sous-expression.

Pièges et points d'attention

  • Confondre efficacité et nombre de cycles.
  • Omettre la normalisation avec un gène de référence.
  • Interpréter incorrectement la courbe de fusion.
  • Ne pas vérifier l’absence de dimères ou contamination.
  • Utiliser la méthode Livak si E GOI ≠ E REF.

Glossaire

  • Calibrateur : échantillon de référence pour la comparaison.
  • Courbe de fusion : graphique de la fluorescence en fonction de la température, permettant d’analyser la spécificité.
  • Dénaturation : séparation des deux brins d’ADN.
  • Efficacité : rapport entre l’amplification réelle et idéale, idéalement proche de 1 (100 %).
  • Intron : séquence non codante d’un gène.
  • Tm : température de fusion de l’ADN.
  • Mutations : modifications ponctuelles ou structurales du génome.
  • Oligonucléotides : amorces ou sondes synthétiques.
  • Transcrits : ARN issu de la transcription.
  • Dissociation : séparation des brins d’ADN lors de la thermofusion.