QCM : Mécanismes de la transcription et maturation — 20 questions

Questions et réponses du QCM

1. Quel élément correspond au point de départ exact de la transcription d’un gène eucaryote ?

Le site d’initiation +1
Le promoteur eucaryote
Le terminateur t
L’intron initial

Le site d’initiation +1

Explication

Le site +1 est le premier nucléotide transcrit dans l’ARN. Le promoteur est la région reconnue pour démarrer la transcription, mais il ne correspond pas au point de départ lui-même.

2. Quel énoncé décrit le mieux la différence entre exons et introns dans un gène eucaryote ?

Les exons sont conservés dans l’ARN mature, alors que les introns sont retirés
Les exons sont retirés avant la maturation, alors que les introns restent dans l’ARN mature
Les introns participent à la séquence conservée de l’ARN, alors que les exons sont éliminés
Les introns et les exons ont exactement le même rôle après l’épissage

Les exons sont conservés dans l’ARN mature, alors que les introns sont retirés

Explication

Les exons sont conservés dans l’ARN mature, tandis que les introns sont excisés lors de l’épissage. C’est une caractéristique fondamentale de l’organisation des gènes eucaryotes.

3. Dans quel sens le brin matrice d’ADN est-il lu pendant la transcription ?

5’ vers 5’
5’ vers 3’
3’ vers 5’
3’ vers 3’

3’ vers 5’

Explication

Le brin matrice est lu dans le sens 3’→5’, ce qui permet la synthèse de l’ARN dans le sens 5’→3’. L’orientation est donc inversée entre lecture et synthèse.

4. Quelle affirmation est correcte à propos des ARN polymérases eucaryotes ?

La pol I transcrit principalement les ARNm
Une seule ARN polymérase transcrit tous les types d’ARN
La pol II transcrit uniquement les ARNr 5S et les ARNt
Les pol I, II et III transcrivent chacune des catégories de gènes différentes

Les pol I, II et III transcrivent chacune des catégories de gènes différentes

Explication

Chez les eucaryotes, les ARN polymérases sont spécialisées : pol I, pol II et pol III transcrivent des classes différentes de gènes. La pol II est notamment associée à la synthèse des ARNm.

5. Quel motif est reconnu par la sous-unité sigma 70 au niveau de la boîte -10 du promoteur bactérien ?

TATAAT
AAUAAA
GUAG
TTGACA

TATAAT

Explication

La boîte -10, aussi appelée boîte de Pribnow, a pour séquence consensus TATAAT. Elle est reconnue par sigma 70 dans le complexe d’initiation bactérien.

6. Quel intervalle d’espacement est typiquement observé entre les boîtes -35 et -10 d’un promoteur bactérien ?

15 à 18 pb
25 à 30 pb
10 à 12 pb
5 à 8 pb

15 à 18 pb

Explication

L’espacement optimal entre les éléments -35 et -10 est généralement de 15 à 18 paires de bases. Cet arrangement aide l’ARN polymérase à s’aligner correctement sur le promoteur.

7. Quelle sous-unité de TFIID se fixe à la boîte TATA pour initier l’assemblage du complexe de pré-initiation ?

TFIIF
TBP
TFIIE
CTD

TBP

Explication

TBP, une sous-unité de TFIID, se fixe à la TATA box et sert d’ancrage initial au promoteur. TFIIE et TFIIF interviennent plus tard dans l’assemblage.

8. Quel est le rôle principal de TFIIH lors de l’initiation par l’ARN polymérase II ?

Reconnaître directement le site +1
Cliver l’intron au niveau du lariat
Ajouter la coiffe 5’ à l’ARN naissant
Ouvrir l’ADN et phosphoryler le domaine CTD

Ouvrir l’ADN et phosphoryler le domaine CTD

Explication

TFIIH possède une activité hélicase qui ouvre l’ADN, et il participe aussi à la phosphorylation du CTD de la pol II. Cette phosphorylation favorise la transition vers l’élongation.

9. Quel mécanisme de terminaison bactérienne dépend du facteur Rho ?

Une tige-boucle sans polyU qui ralentit l’ARN polymérase
La reconnaissance d’un signal PAS en 3’
La présence d’une coiffe 5’ sur l’ARN
Une tige-boucle suivie d’une région riche en U

Une tige-boucle sans polyU qui ralentit l’ARN polymérase

Explication

La terminaison rho-dépendante nécessite Rho, qui se fixe sur l’ARN au site rut et rattrape l’ARN polymérase lors d’une pause. La tige-boucle avec région riche en U correspond plutôt à la terminaison rho-indépendante.

10. Quel énoncé décrit le mieux la terminaison eucaryote liée au signal de polyadénylation ?

Elle repose sur une région riche en U qui provoque le décrochage
Elle est couplée à la polyadénylation et peut suivre un modèle torpille
Elle dépend du facteur Rho et du site rut
Elle se produit avant toute synthèse d’ARN

Elle est couplée à la polyadénylation et peut suivre un modèle torpille

Explication

Chez les eucaryotes, la terminaison est couplée à la polyadénylation et peut être expliquée par le modèle torpille. Rho et le site rut sont des éléments de terminaison bactérienne, pas eucaryote.

11. Quelle modification de l’ARN pré-messager se met en place dès le début de la transcription et protège l’extrémité 5’ de l’ARN ?

L’élimination des introns
La méthylation des opérateurs
L’ajout d’une queue polyA
L’ajout d’une coiffe 5’

L’ajout d’une coiffe 5’

Explication

La coiffe 5’ se forme très tôt pendant la transcription et protège l’ARN des RNases tout en facilitant sa reconnaissance par le ribosome. La queue polyA intervient plus tard, à l’extrémité 3’.

12. Quel signal dirige la coupure de l’ARN et l’ajout de la queue polyA au cours de la maturation de l’ARNm eucaryote ?

La boîte Pribnow
La boîte -35
Le signal PAS
Le site rut

Le signal PAS

Explication

Le signal PAS spécifie le site de polyadénylation et déclenche la coupure suivie de l’ajout de la queue polyA. La boîte Pribnow et la boîte -35 sont des éléments de promoteur bactérien, pas de maturation de l’ARNm.

13. Quel complexe ribonucléoprotéique réalise l’épissage des introns dans la majorité des pré-ARNm eucaryotes ?

Le spliceosome
Le ribosome
Le médiator
L’holoenzyme bactérienne

Le spliceosome

Explication

Le spliceosome, constitué de snRNP, reconnaît les bornes d’introns et catalyse l’épissage. Le médiator et l’holoenzyme bactérienne interviennent dans la transcription, pas dans l’épissage.

14. Quel rôle principal jouent les protéines SR dans l’épissage ?

Elles détruisent les introns après la traduction
Elles se fixent au site rut pour arrêter la transcription
Elles activent la reconnaissance des bornes d’introns via des séquences ESE
Elles remplacent l’ARN polymérase II au promoteur

Elles activent la reconnaissance des bornes d’introns via des séquences ESE

Explication

Les protéines SR se lient à des séquences exoniques ESE et favorisent la reconnaissance des bornes d’épissage par la machinerie de maturation. Le site rut concerne la terminaison rho-dépendante chez les bactéries.

15. Quel événement illustre le mieux le couplage entre transcription et maturation chez les eucaryotes ?

La fixation de Rho sur l’ARN naissant pour arrêter l’élongation
La reconnaissance de la boîte -10 par sigma 70
Le recrutement progressif des facteurs de coiffe, d’épissage et de polyadénylation par l’ARN pol II
La coupure directe de l’ARNm mature dans le cytoplasme

Le recrutement progressif des facteurs de coiffe, d’épissage et de polyadénylation par l’ARN pol II

Explication

Le couplage repose sur le fait que l’ARN polymérase II recrute au cours de la transcription les facteurs nécessaires à la maturation. Rho et sigma 70 sont des acteurs de la transcription bactérienne.

16. Quel est le rôle du domaine CTD de l’ARN polymérase II dans la maturation des ARNm ?

Former la coiffe 5’ sans intervention d’autres protéines
Servir de plate-forme de recrutement pour les facteurs de maturation
Reconnaître directement la séquence AAUAAA
Cliver les introns par activité enzymatique propre

Servir de plate-forme de recrutement pour les facteurs de maturation

Explication

Le CTD sert de plate-forme d’assemblage pour les facteurs de coiffe, d’épissage et de polyadénylation. Il ne reconnaît pas lui-même le signal AAUAAA et n’assure pas seul les réactions chimiques.

17. Quel type d’épissage alternatif correspond à la conservation d’un intron dans l’ARN mature ?

L’intron retenu
L’exon mutuellement exclusif
L’exon cassette
Le site 5’ alternatif

L’intron retenu

Explication

Un intron retenu n’est pas éliminé et reste présent dans l’ARN final. Un exon cassette correspond au retrait variable d’un exon, pas d’un intron.

18. Comment les séquences ESE et ESS influencent-elles le choix d’un site d’épissage ?

Les deux séquences interviennent uniquement dans la polyadénylation
Les deux séquences sont reconnues par l’ARN polymérase II
Les ESE favorisent l’épissage, tandis que les ESS le répriment
Les ESE bloquent l’épissage, tandis que les ESS l’activent

Les ESE favorisent l’épissage, tandis que les ESS le répriment

Explication

Les ESE recrutent des protéines SR qui activent la reconnaissance des bornes d’épissage, alors que les ESS recrutent des hnRNP qui la freinent. Ces séquences contrôlent donc l’épissage, pas la polyadénylation.

19. Quel est le rôle du répresseur LacR en l’absence d’inducteur ?

Il remplace l’ARN polymérase sur le promoteur
Il empêche la transcription des gènes de l’opéron lactose
Il dégrade l’allolactose dans le cytoplasme
Il active fortement la production de β-galactosidase

Il empêche la transcription des gènes de l’opéron lactose

Explication

Sans inducteur, LacR se fixe sur les opérateurs et bloque l’accès de l’ARN polymérase, ce qui maintient une faible expression. Il n’active l’opéron qu’après liaison de l’allolactose ou d’un inducteur équivalent.

20. Quel effet a le complexe CRP-AMPc sur l’opéron lactose lorsque le glucose est faible ?

Il augmente l’expression de l’opéron lactose
Il empêche la formation de l’opérateur
Il bloque définitivement la liaison de LacR
Il remplace l’allolactose comme inducteur direct

Il augmente l’expression de l’opéron lactose

Explication

Le complexe CRP-AMPc agit comme régulateur catabolique et stimule l’expression de l’opéron lactose en condition de faible glucose. Il ne remplace pas l’allolactose, qui reste l’inducteur naturel de LacR.

Révisez avec les flashcards

Mémorisez les réponses avec 20 flashcards sur Mécanismes de la transcription et maturation.

Structure du gène eucaryote

Comporte promoteur, exons, introns, site +1, terminateur.

ARN polymérase bactérienne

Enzyme synthétisant l’ARN à partir d’un brin matrice.

Promoteur bactérien

Séquence ADN reconnue pour initier la transcription.

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