QCM : Culture végétale in vitro — 23 questions

Questions et réponses du QCM

1. Quel est l’objectif principal de la micropropagation végétale in vitro ?

Éliminer des polluants grâce à des plantes cultivées
Multiplier une plante jusqu’à obtenir des vitroplants
Produire des molécules bioactives dans un bioréacteur
Modifier les voies métaboliques d’une plante

Multiplier une plante jusqu’à obtenir des vitroplants

Explication

La micropropagation consiste à multiplier une plante par organogenèse ou embryogenèse somatique jusqu’à l’obtention de vitroplants. La production de molécules bioactives relève plutôt de la bioproduction.

2. Une culture de cellules végétales conduite en bioréacteur pour obtenir des molécules bioactives relève de quelle application ?

La phytoremédiation
La micropropagation
La bioproduction
La réintroduction

La bioproduction

Explication

La bioproduction utilise des cultures de cellules ou d’organes, notamment en bioréacteurs, afin de produire des molécules bioactives. La micropropagation vise plutôt la multiplication végétale et l’obtention de vitroplants.

3. Laquelle de ces propositions regroupe des applications de la culture végétale in vitro ?

Micropropagation, pollinisation, hybridation, récolte et conservation des semences
Bioproduction, irrigation, fertilisation, taille et multiplication par bouturage
Réintroduction, germination naturelle, sélection variétale, greffage et phytopathologie
Micropropagation, bioproduction, réintroduction, phytoremédiation et ingénierie métabolique

Micropropagation, bioproduction, réintroduction, phytoremédiation et ingénierie métabolique

Explication

Les applications citées comprennent la micropropagation, la bioproduction, la réintroduction, la phytoremédiation et l’ingénierie métabolique. Les autres ensembles mélangent des pratiques qui ne constituent pas cette liste d’applications de la culture in vitro.

4. Comment la balance entre les concentrations d’auxines et de cytokinines influence-t-elle une culture végétale in vitro ?

Elle détermine le matériel de départ en sélectionnant l’explant utilisé
Elle oriente le développement vers la rhizogénèse, la callogénèse ou la caulogénèse
Elle règle principalement le volume de milieu nécessaire au bioréacteur
Elle transforme directement les molécules bioactives en tissus végétaux

Elle oriente le développement vers la rhizogénèse, la callogénèse ou la caulogénèse

Explication

La balance auxines-cytokinines oriente le développement in vitro vers la formation de racines, de cals ou de pousses. Le choix du matériel de départ dépend plutôt de l’explant, et non de cette balance hormonale.

5. Que désigne la callogénèse dans une culture végétale in vitro ?

La formation de racines adventives à partir d’un matériel végétal
La multiplication d’une plante jusqu’à l’obtention de vitroplants
La formation de cals à partir d’explants cultivés in vitro
La formation de pousses à partir de tissus végétaux cultivés

La formation de cals à partir d’explants cultivés in vitro

Explication

La callogénèse est la formation de cals à partir d’explants cultivés in vitro. La formation de racines correspond à la rhizogénèse, tandis que la formation de pousses correspond à la caulogénèse.

6. Quel processus correspond à la formation de racines, notamment de racines adventives, en culture végétale in vitro ?

La callogénèse
La caulogénèse
La rhizogénèse
La bioproduction

La rhizogénèse

Explication

La rhizogénèse désigne la formation de racines, notamment de racines adventives, à partir de matériel végétal cultivé in vitro. La callogénèse forme des cals et la caulogénèse forme des pousses.

7. Dans un protocole de mise en suspension cellulaire de lin, quelle succession de conditions est correcte ?

5 g de cals dans 50 mL, agitation à 130 rpm pendant 10 jours, puis dilutions progressives
5 g de cals dans 50 mL, agitation à 30 rpm pendant 10 jours, puis transfert direct en bioréacteur
5 g de cals dans 50 mL, incubation sans agitation pendant 15 jours, puis ajout de milieu concentré
50 g de cals dans 5 mL, agitation à 130 rpm pendant 10 jours, puis concentration progressive

5 g de cals dans 50 mL, agitation à 130 rpm pendant 10 jours, puis dilutions progressives

Explication

La suspension commence avec 5 g de cals de lin dans 50 mL de milieu, sous agitation à 130 rpm pendant 10 jours, avant des dilutions de moitié puis au quart. Les autres propositions modifient les quantités, l’agitation ou les étapes de transfert.

8. Vers quel dispositif conduit le passage à l’échelle supérieure d’une suspension cellulaire végétale ?

Des bioréacteurs
Des explants fraîchement prélevés
Des vitroplants destinés à la multiplication
Des boîtes de culture de petit volume

Des bioréacteurs

Explication

Le passage à l’échelle supérieure des suspensions cellulaires conduit à une production en bioréacteurs. Les petits volumes correspondent plutôt aux étapes initiales de mise en culture, tandis que les vitroplants relèvent de la multiplication végétale.

9. Quelle distinction caractérise l’organogénèse directe par rapport à l’organogénèse indirecte ?

Elle forme des organes après une phase obligatoire de maturation.
Elle produit des racines à partir d’organes déjà différenciés.
Elle nécessite une multiplication cellulaire sans formation d’organes.
Elle forme des organes sans passer par une phase de cal.

Elle forme des organes sans passer par une phase de cal.

Explication

L’organogénèse directe produit des organes à partir d’explants sans phase de callogénèse intermédiaire. L’organogénèse indirecte, au contraire, passe par la formation d’un cal avant l’apparition des organes.

10. Dans l’exemple de micropropagation de Gymnema sylvestre, quel résultat est obtenu à partir d’un explant en quatre à cinq mois ?

Environ 4 plantes sont obtenues.
Environ 400 plantes sont obtenues.
Environ 4 000 plantes sont obtenues.
Environ 40 plantes sont obtenues.

Environ 400 plantes sont obtenues.

Explication

L’exemple de Gymnema sylvestre montre qu’un explant peut permettre d’obtenir environ 400 plantes en quatre à cinq mois. Les autres quantités ne correspondent pas au rendement indiqué pour cette micropropagation.

11. Quel ensemble décrit le mieux la composition de base d’un milieu nutritif de culture végétale in vitro ?

Sucre, chlorophylle, acides aminés, cire et agents antimicrobiens.
Sels minéraux, amidon, cellulose, enzymes et composés volatils.
Eau déminéralisée, sels minéraux, hormones, sucre et vitamines.
Eau distillée, protéines, lipides, pigments et acides nucléiques.

Eau déminéralisée, sels minéraux, hormones, sucre et vitamines.

Explication

Un milieu nutritif végétal contient notamment de l’eau déminéralisée, des sels minéraux, des hormones, du sucre et des vitamines. Un gélifiant ou d’autres additifs peuvent aussi être incorporés, mais les protéines et les pigments ne constituent pas sa base générale.

12. Quels sont les milieux minéraux couramment employés pour la culture végétale in vitro ?

Murashige et Skoog, sous forme MS ou MS 1/2, et Gamborg B5.
White, Nitsch et Hoagland, chacun sous forme concentrée.
Gamborg B5, Knop complet et Murashige et Skoog enrichi en azote.
Hoagland complet, Knop concentré et White doublement dilué.

Murashige et Skoog, sous forme MS ou MS 1/2, et Gamborg B5.

Explication

Les formulations minérales courantes comprennent Murashige et Skoog, sous forme MS ou MS 1/2, ainsi que Gamborg B5. Les autres formulations citées sont des milieux connus en culture végétale, mais elles ne constituent pas l’ensemble indiqué ici.

13. Quelle plage de concentration correspond aux auxines dans les milieux de culture végétale in vitro ?

De 0,001 à 5 mg/L.
De 10 à 100 mg/L.
De 1 à 50 mg/L.
De 0,01 à 10 mg/L.

De 0,01 à 10 mg/L.

Explication

Les auxines sont utilisées dans une plage allant de 0,01 à 10 mg/L. La plage de 0,001 à 5 mg/L correspond aux cytokinines, ce qui constitue une confusion fréquente entre ces deux familles hormonales.

14. Lors de la préparation d’un milieu de culture, comment traite-t-on un composé thermolabile ?

On l’ajoute après l’autoclavage du milieu refroidi.
On l’ajoute avant le réglage du pH et du volume.
On le remplace par un gélifiant avant la stérilisation.
On le mélange aux sels minéraux puis on augmente la température.

On l’ajoute après l’autoclavage du milieu refroidi.

Explication

Les composés thermolabiles sont ajoutés après l’autoclavage, car la chaleur de la stérilisation peut les dégrader. Le milieu peut donc être stérilisé avant leur incorporation, contrairement à l’ajout préalable qui les exposerait à la chaleur.

15. Que désigne l’élicitation dans la bioproduction de métabolites ?

La stimulation de métabolites secondaires par des éliciteurs biotiques, abiotiques ou hormonaux.
La multiplication de tissus végétaux par des hormones favorisant la rhizogénèse.
La séparation de composés végétaux selon leur solubilité dans un extracteur.
La transformation de métabolites secondaires en sucres par des enzymes cellulaires.

La stimulation de métabolites secondaires par des éliciteurs biotiques, abiotiques ou hormonaux.

Explication

L’élicitation consiste à stimuler la production de métabolites secondaires grâce à des éliciteurs d’origine biotique, abiotique ou hormonale. Elle ne désigne ni une séparation chimique ni une conversion enzymatique des métabolites.

16. Quelle association entre un éliciteur et sa catégorie est correcte ?

Les UV sont hormonaux et les champignons inactivés sont abiotiques.
Les UV sont biotiques et les champignons inactivés sont hormonaux.
Les UV sont biotiques et les champignons inactivés sont abiotiques.
Les UV sont abiotiques et les champignons inactivés sont biotiques.

Les UV sont abiotiques et les champignons inactivés sont biotiques.

Explication

Les UV sont des facteurs physiques et appartiennent donc aux éliciteurs abiotiques, tandis que les champignons inactivés proviennent d’organismes et sont biotiques. Le jasmonate, par comparaison, relève des éliciteurs hormonaux.

17. Quelle propriété caractérise la shikonine produite par Lithospermum erythrorhizon ?

Cette alcaloïde stimule principalement la germination et la croissance des racines.
Cette terpène agit surtout comme réserve énergétique et agent gélifiant.
Cette naphtoquinone possède notamment des propriétés colorantes et antibactériennes.
Cette protéine intervient principalement dans l’absorption des sels minéraux.

Cette naphtoquinone possède notamment des propriétés colorantes et antibactériennes.

Explication

La shikonine, ou shikon, est une naphtoquinone de Lithospermum erythrorhizon possédant notamment des propriétés colorantes, antibactériennes, anti-inflammatoires et anticancéreuses. Les autres descriptions concernent des fonctions ou des familles de molécules différentes.

18. Quel mécanisme enzymatique explique le brunissement des cultures et ses effets sur leur développement ?

Les ortho-quinones dégradent la polyphénol oxydase en polyphénols, ce qui favorise la formation de nouveaux tissus.
Les polyphénols convertissent la polyphénol oxydase en ortho-quinones, ce qui augmente la production de pigments.
La polyphénol oxydase transforme les ortho-quinones en polyphénols, ce qui stimule les enzymes et accélère le développement.
La polyphénol oxydase transforme les polyphénols en ortho-quinones, qui inhibent des enzymes et perturbent le développement.

La polyphénol oxydase transforme les polyphénols en ortho-quinones, qui inhibent des enzymes et perturbent le développement.

Explication

La polyphénol oxydase oxyde les polyphénols en ortho-quinones, et ces produits perturbent le fonctionnement enzymatique ainsi que le développement. La confusion fréquente consiste à inverser le rôle des substrats et des produits de la réaction.

19. Dans quel objectif une culture végétale in vitro peut-elle être étudiée en phytoremédiation ?

Induire la formation de racines pour améliorer la reprise des explants cultivés.
Produire des molécules végétales destinées à une formulation industrielle.
Éliminer des colorants présents dans un milieu pollué.
Multiplier rapidement des plantes présentant un caractère agronomique intéressant.

Éliminer des colorants présents dans un milieu pollué.

Explication

La phytoremédiation par culture végétale in vitro peut être étudiée pour éliminer des colorants. La production de molécules relève de la bioproduction, qui correspond à un objectif différent.

20. Quelle succession correspond au protocole de micropropagation du tabac décrit pour les travaux pratiques ?

Stérilisation et germination, callogénèse, caulogénèse, puis rhizogénèse.
Stérilisation et germination, caulogénèse, rhizogénèse, puis callogénèse.
Callogénèse, stérilisation et germination, rhizogénèse, puis caulogénèse.
Germination et rhizogénèse, stérilisation, caulogénèse, puis callogénèse.

Stérilisation et germination, callogénèse, caulogénèse, puis rhizogénèse.

Explication

Le protocole commence par la stérilisation et la germination, suivies de la callogénèse, de la caulogénèse et enfin de la rhizogénèse. La caulogénèse ne précède donc pas la callogénèse dans cette succession.

21. Quel traitement de stérilisation est appliqué aux explants foliaires de tabac ?

Une immersion de 8 minutes dans 2,4 % de chlore actif avec 0,1 % de Tween 20, puis trois rinçages de 3 minutes.
Une immersion de 20 minutes dans 2,4 % de chlore actif sans Tween 20, puis un rinçage de 3 minutes.
Une immersion de 8 minutes dans 0,1 % de chlore actif avec 2,4 % de Tween 20, puis trois rinçages de 3 minutes.
Une immersion de 3 minutes dans 0,1 % de chlore actif avec 2,4 % de Tween 20, puis deux rinçages de 8 minutes.

Une immersion de 8 minutes dans 2,4 % de chlore actif avec 0,1 % de Tween 20, puis trois rinçages de 3 minutes.

Explication

Les explants sont immergés pendant 8 minutes dans de l’hypochlorite contenant 2,4 % de chlore actif et 0,1 % de Tween 20, puis rincés trois fois pendant 3 minutes. Les autres protocoles modifient la concentration, la durée ou le nombre de rinçages.

22. Quelles conditions de traitement du milieu et de culture sont utilisées pour le tabac ?

Autoclavage pendant 3 à 4 semaines à 120 °C, puis culture à 24 °C sous 12 heures de lumière et 12 heures d’obscurité.
Autoclavage pendant 20 minutes à 24 °C, puis culture à 120 °C sous 16 heures de lumière et 8 heures d’obscurité.
Autoclavage pendant 20 minutes à 120 °C, puis culture à 24 °C sous 16 heures de lumière et 8 heures d’obscurité.
Autoclavage pendant 8 minutes à 120 °C, puis culture à 24 °C sous 8 heures de lumière et 16 heures d’obscurité.

Autoclavage pendant 20 minutes à 120 °C, puis culture à 24 °C sous 16 heures de lumière et 8 heures d’obscurité.

Explication

Le milieu est autoclavé 20 minutes à 120 °C, puis les cultures sont maintenues à 24 °C avec une photopériode de 16 heures de lumière et 8 heures d’obscurité. La durée de maintien en culture est ensuite de 3 à 4 semaines, et non une durée d’autoclavage.

23. Quelle contrainte de longueur s’applique à une short communication dans le cadre de l’évaluation ?

Elle ne dépasse pas 4 pages de texte, tandis que les figures, tableaux et références sont comptés à part.
Elle est limitée à 2 pages imprimées, les références pouvant être ajoutées en supplément.
Elle ne dépasse pas 4 pages imprimées, en incluant les figures, les tableaux et les références.
Elle comporte au moins 4 pages imprimées afin de présenter une investigation complète et détaillée.

Elle ne dépasse pas 4 pages imprimées, en incluant les figures, les tableaux et les références.

Explication

Une short communication doit présenter de façon concise mais complète une investigation limitée et ne pas dépasser 4 pages imprimées, tous les éléments étant inclus. Les figures, tableaux et références ne constituent donc pas des pages supplémentaires.

Révisez avec les flashcards

Mémorisez les réponses avec 45 flashcards sur Culture végétale in vitro.

Qu'est-ce que la micropropagation en culture in vitro ?

La multiplication d’une plante par organogenèse ou embryogenèse somatique.

Qu'impose la micropropagation pour obtenir des vitroplants ?

La multiplication jusqu’à l’obtention de vitroplants.

Qu'est-ce que la bioproduction en culture in vitro ?

L'utilisation de cultures cellulaires ou d’organes pour produire des molécules bioactives.

Voir les flashcards →

Approfondir avec la fiche

Consultez la fiche de révision complète sur Culture végétale in vitro.

Voir la fiche →

Cours similaires

Crée tes propres QCM

Importe ton cours et l'IA génère des QCM avec corrections en 30 secondes.

Générateur de QCM