QCM : Régulation de l’expression des gènes (11 questions)

Questions et réponses du QCM

1. Comment expliquer les différences observées entre différents types cellulaires d’un même organisme ?

Par des mutations touchant toutes les cellules
Par une quantité identique de chaque ARN
Par des génotypes entièrement différents
Par une expression différentielle des gènes

Par une expression différentielle des gènes

Explication

Les types cellulaires se distinguent notamment parce qu’ils n’expriment pas les mêmes gènes de la même manière. Des génotypes entièrement différents n’expliquent pas généralement ces différences entre cellules d’un même organisme.

2. Une cellule produit moins d’une protéine donnée après une modification de la régulation de son expression génique. Quelle explication est compatible avec ce mécanisme ?

La régulation concerne les signaux reçus, mais pas la production des molécules
La régulation peut agir à plusieurs niveaux et modifier la production d’ARNm et de protéines
La régulation modifie les protéines sans pouvoir influer sur la production d’ARNm
La régulation agit uniquement sur la séquence d’ADN, sans effet sur les ARN

La régulation peut agir à plusieurs niveaux et modifier la production d’ARNm et de protéines

Explication

La régulation de l’expression génique peut intervenir à plusieurs niveaux et influer sur la production d’ARNm comme sur celle des protéines. Une action limitée à la séquence d’ADN ne rend pas compte de ces différents niveaux de régulation.

3. Quelle différence essentielle distingue la RT-PCR de la RT-qPCR pour comparer l’expression d’un gène entre échantillons ?

La RT-PCR calcule un pourcentage de différence, tandis que la RT-qPCR donne un résultat semi-quantitatif
La RT-PCR quantifie les protéines, tandis que la RT-qPCR quantifie directement les cellules
La RT-PCR mesure les longueurs des ARN, tandis que la RT-qPCR détecte leur épissage alternatif
La RT-PCR donne un résultat semi-quantitatif, tandis que la RT-qPCR permet de calculer un pourcentage de différence

La RT-PCR donne un résultat semi-quantitatif, tandis que la RT-qPCR permet de calculer un pourcentage de différence

Explication

La RT-PCR fournit un résultat semi-quantitatif, alors que la RT-qPCR permet de calculer un pourcentage de différence entre échantillons. La capacité de calculer ce pourcentage n’est donc pas attribuée à la RT-PCR.

4. Quel enchaînement décrit une analyse d’expression génique par RT-PCR ou RT-qPCR ?

Réaliser une PCR spécifique, extraire les ARN totaux, puis effectuer une transcription inverse
Extraire les ARN totaux, effectuer une transcription inverse, puis réaliser une PCR spécifique de l’ARN ciblé
Effectuer une transcription inverse, réaliser une PCR spécifique, puis extraire les ARN totaux
Extraire les protéines, effectuer une transcription inverse, puis réaliser une PCR non spécifique

Extraire les ARN totaux, effectuer une transcription inverse, puis réaliser une PCR spécifique de l’ARN ciblé

Explication

L’analyse commence par l’extraction des ARN totaux, se poursuit par leur transcription inverse et se termine par une PCR spécifique de l’ARN à quantifier. Une PCR réalisée avant l’extraction et la transcription inverse ne respecte pas cet enchaînement.

5. Qu’est-ce qu’un facteur de transcription dans la régulation de l’expression des gènes ?

Un complexe protéique qui relie les ribosomes à la région 3’UTR des ARNm
Une enzyme qui transforme les introns en ARN codant dans le noyau
Une protéine qui dégrade les ARNm portant un codon stop prématuré
Une protéine qui reconnaît une séquence précise d’ADN dans un promoteur ou un enhancer

Une protéine qui reconnaît une séquence précise d’ADN dans un promoteur ou un enhancer

Explication

Un facteur de transcription est une protéine qui reconnaît une séquence spécifique d’ADN située dans un promoteur ou un enhancer. Le médiateur, contrairement à un facteur de transcription, relie le complexe d’initiation aux facteurs spécifiques.

6. Lors de l’épissage du pré-ARNm nucléaire, quel événement caractérise les réactions de transestérification avant l’élimination de l’intron ?

La formation d’un lasso à partir de l’intron grâce au site de branchement.
Le recrutement de U2AF et U1 par les protéines SR fixées aux ESE.
La production de protéines aux domaines fonctionnels différents par épissage alternatif.
La coupure de l’intron par un ARN enzymatique codé par l’intron.

La formation d’un lasso à partir de l’intron grâce au site de branchement.

Explication

Le site de branchement participe aux réactions de transestérification qui relient temporairement les extrémités de l’intron en lasso avant son élimination. L’utilisation d’un ARN enzymatique codé par l’intron concerne les introns des groupes I et II, et non l’épissage fréquent du pré-ARNm nucléaire.

7. Quel rôle joue le renouvellement des ARNm dans la cellule ?

Il garantit que tous les ARNm sont traduits à un rythme constant.
Il dirige les facteurs d’épissage vers les transcrits en cours de synthèse.
Il permet d’adapter l’activité cellulaire aux variations de l’environnement ou de l’organisme.
Il empêche la formation de codons stop prématurés dans les ARNm.

Il permet d’adapter l’activité cellulaire aux variations de l’environnement ou de l’organisme.

Explication

Le renouvellement des ARNm permet à la cellule de modifier rapidement les transcrits disponibles en réponse aux variations de son environnement ou de son organisme. La régulation de l’épissage concerne la maturation des transcrits, mais ne constitue pas le rôle du renouvellement des ARNm.

8. Quelle différence d’origine distingue les shRNA des siRNA utilisés dans l’interférence par les ARN ?

Les shRNA ciblent les régions 3’UTR des ARNm, tandis que les siRNA régulent l’expression en se liant aux promoteurs.
Les shRNA sont transcrits à partir de gènes codant des protéines, tandis que les siRNA sont produits à partir d’éléments transposables.
Les shRNA sont des ARN double brin transfectés directement dans les cellules, tandis que les siRNA proviennent d’une séquence d’ADN transférée dans le noyau.
Les shRNA proviennent d’une séquence d’ADN transférée dans le noyau, tandis que les siRNA sont des ARN double brin transfectés directement dans les cellules.

Les shRNA proviennent d’une séquence d’ADN transférée dans le noyau, tandis que les siRNA sont des ARN double brin transfectés directement dans les cellules.

Explication

Les shRNA sont produits à partir d’une séquence d’ADN transférée dans le noyau, alors que les siRNA sont apportés sous forme d’ARN double brin directement dans les cellules. L’option qui inverse ces origines confond leurs modes de production.

9. Quelle comparaison décrit correctement l’effet de la voie mTOR et des miRNA via la 3’UTR sur la traduction ?

La voie mTOR favorise la traduction, tandis que les miRNA via la 3’UTR n’agissent que sur la transcription.
La voie mTOR agit sur la dégradation des protéines, tandis que les miRNA via la 3’UTR favorisent la traduction.
La voie mTOR favorise la traduction, tandis que les miRNA via la 3’UTR l’inhibent.
La voie mTOR inhibe la traduction, tandis que les miRNA via la 3’UTR la favorisent.

La voie mTOR favorise la traduction, tandis que les miRNA via la 3’UTR l’inhibent.

Explication

La voie mTOR est associée à une augmentation de la traduction, alors que les miRNA se liant à la 3’UTR sont présentés comme des inhibiteurs de la traduction. L’option qui attribue aux miRNA un effet stimulant inverse leur rôle décrit.

10. Si une protéine régulatrice est dégradée après seulement quelques minutes, quelle conséquence cela peut-il avoir sur sa quantité cellulaire ?

Sa quantité reste stable, car elle est protégée de la dégradation.
Sa quantité augmente durablement, car elle est recyclée par le lysosome.
Sa quantité varie peu, car les protéines régulatrices vivent longtemps.
Sa quantité peut diminuer rapidement, car sa durée de vie est courte.

Sa quantité peut diminuer rapidement, car sa durée de vie est courte.

Explication

Une durée de vie de quelques minutes, comme celle des cyclines, permet à la cellule de réduire rapidement la quantité de cette protéine régulatrice. À l’inverse, les protéines de structure ont généralement une durée de vie longue et ne disparaissent pas aussi rapidement.

11. Pour comprendre pourquoi deux types cellulaires exposés à des signaux différents produisent des protéines différentes malgré un génome commun, quel mécanisme faut-il examiner ?

Une modification générale du génotype propre à chaque type cellulaire
Une recombinaison des loci immunitaires dans toutes les cellules de l’organisme
Une expression différentielle des gènes, modulée en réponse aux signaux reçus
Une absence de génome dans les cellules qui produisent des protéines différentes

Une expression différentielle des gènes, modulée en réponse aux signaux reçus

Explication

Des signaux, notamment ceux liés au développement ou à l’homéostasie, peuvent moduler l’expression des gènes et ainsi contribuer aux différences de production protéique. La recombinaison de loci immunitaires concerne les lymphocytes B et T, pas l’ensemble des types cellulaires.

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Quelles cellules font exception au génotype commun des cellules d’un organisme ?

Les hématies et les lymphocytes B et T.

Qu’est-ce qui explique les différences entre types cellulaires ?

L’expression différentielle des gènes.

Quel résultat la RT-PCR fournit-elle sans calculer un pourcentage de différence ?

Un résultat semi-quantitatif.

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