★ À maîtriser
📌 Chez les procaryotes, plusieurs gènes peuvent appartenir à une même unité de transcription polycistronique, comme l’opéron lactose, tandis que les unités de transcription eucaryotes sont monocistroniques, sauf exception chez certains vertébrés.
📌 Les gènes eucaryotes de classe 2 produisent des précurseurs d’ARN messagers traduits en protéines et comprennent des exons codants et des introns non codants.
Compléments
La transcription des gènes eucaryotes de classe 1 produit un précurseur d’ARN qui est maturé en différents ARN ribosomiques.
Les procaryotes ne possèdent pas d’introns.
Les gènes eucaryotes de classe 3 produisent des ARNt, des ARNr 5S et de petits ARN, mais ne sont pas tous répétés en tandem comme les gènes de classe 1.
★ À maîtriser
La transcription des gènes eucaryotes codant les protéines est assurée par l’ARN polymérase II, tandis que les bactéries possèdent une ARN polymérase unique.
L’ARN polymérase I synthétise le précurseur des ARNr 28S, 18S et 5,8S.
L’ARN polymérase II synthétise les précurseurs des ARNm codant les protéines et la grande majorité des petits ARN nucléaires et nucléolaires stables non traduits.
L’ARN polymérase III synthétise l’ARNr 5S, les ARNt et plusieurs petits ARN nucléaires non traduits.
Les ribosomes bactériens sont de 70S, avec des sous-unités 50S et 30S, tandis que les ribosomes eucaryotes sont de 80S, avec des sous-unités 60S et 40S; les coefficients de sédimentation ne sont pas additifs.
Compléments
📌 L’ARN est essentiellement monocaténaire, mais il peut former des régions partiellement bicaténaires par appariement intramoléculaire ou s’associer à un brin d’ADN pour former un hétéroduplex.
Les ARNr représentent environ 80 % des ARN cellulaires totaux, et les ribosomes sont constitués d’environ 35 % de protéines et 65 % d’ARN.
Chez les eucaryotes, les ARNr sont transcrits dans le noyau, maturés et assemblés avec des protéines dans les nucléoles, puis les sous-unités ribosomiques passent dans le cytoplasme.
70S bactérien contre 80S eucaryote
★ À maîtriser
La boîte TATA, aussi appelée boîte de Hogness, se trouve du côté 5′ dans environ 80 % des promoteurs et généralement à 25–30 paires de bases en amont du site de départ de transcription (+1).
L’ARN polymérase II ne suffit pas à initier la transcription et nécessite des facteurs généraux de transcription qui interagissent avec le promoteur et recrutent ou activent le complexe d’initiation.
Compléments
La boîte TATA est une séquence d’environ 8 paires de bases riche en adénines et thymines, dont le consensus indiqué est GTATAAAAGGCGGGG malgré de nombreuses variations.
La boîte CAAT est un élément cis-régulateur situé environ 75 paires de bases en amont de nombreux promoteurs eucaryotes transcrits par l’ARN polymérase II.
L’INR se trouve autour du site de début de transcription, entre les positions −3 et +5, et est présent dans environ 60 % des promoteurs; l’ARN polymérase II peut parfois initier avec l’INR seul.
TFIID se fixe au promoteur, notamment à la boîte TATA par sa protéine TBP lorsqu’elle est présente, et TFIIA stabilise TFIID sur le promoteur.
TFIIB se fixe en aval de la boîte TATA près du site d’initiation et recrute l’ARN polymérase ainsi que TFIIF.
TFIIE recrute TFIIH, dont l’activité hélicase participe à l’ouverture de l’ADN et dont l’activité kinase phosphoryle le domaine CTD de l’ARN polymérase II pour activer la transcription.
Les îlots CpG sont des régions riches en dinucléotides CG, souvent associées aux régions 5′ des gènes de vertébrés, longues typiquement de 1 à 2 kb et composées d’environ 70 % de G et C, contre 40 % dans le reste du génome humain.
Les îlots CpG sont associés à tous les gènes housekeeping et à 40 % des gènes tissu-spécifiques.
★ À maîtriser
L’ARN polymérase bactérienne minimale comprend deux sous-unités α, une sous-unité β et une sous-unité β′; le facteur sigma lui permet de reconnaître les promoteurs et d’initier la transcription.
Chez les bactéries, le facteur sigma dirige l’ARN polymérase vers le promoteur et le bon site de départ, puis quitte le complexe au début de l’élongation; l’ARN est ensuite allongé de 5′ vers 3′ jusqu’au site de terminaison.
📌 La terminaison bactérienne intrinsèque repose sur un terminateur transcrit formant une épingle à cheveux riche en GC suivie d’une série de U, tandis que la terminaison dépendante de rho nécessite le facteur protéique rho.
Compléments
📌 Chez E. coli, des mutations dans les régions −10 ou −35, ou des délétions modifiant leurs distances entre elles ou par rapport au site de départ, affectent l’initiation de la transcription.
★ À maîtriser
📌 La coiffe en 5′ protège l’ARNm contre la dégradation par les exonucléases et est nécessaire à son export vers le cytoplasme et à sa liaison avec la petite sous-unité ribosomique lors de l’initiation de la traduction.
📌 Chez les eucaryotes, la queue poly(A) stabilise généralement les ARN, tandis que chez les bactéries la polyadénylation favorise leur dégradation par le dégradosome.
Compléments
La coiffe est ajoutée au début de la transcription, avant que l’ARN ne compte 30 nucléotides, par ajout d’une guanine en 5′ puis méthylation de cette base et du ribose du premier ou des deux premiers nucléotides.
La queue poly(A) peut atteindre environ 200 nucléotides chez les eucaryotes supérieurs et environ 50 nucléotides chez les levures.
La poly(A) polymérase ajoute des adénosines à l’extrémité 3′ de l’ARN en utilisant l’ATP, sans matrice d’ADN.
Chez les eucaryotes, la polyadénylation des transcrits de l’ARN polymérase II est dirigée par le signal AAUAAA, auquel se fixe notamment le complexe CPSF qui participe au clivage de l’ARN.
📌 La majorité des ARNm eucaryotes sont polyadénylés, mais certains ARNm viraux et les ARNm des histones font exception.
Coiffe 5′, queue poly(A) 3′, puis épissage
★ À maîtriser
📌 L’épissage alternatif permet à une séquence génomique unique de produire plusieurs ARNm et des protéines distinctes par des choix différents de sites d’épissage et d’inclusion ou d’exclusion d’exons.
Compléments
Le spliceosome comprend les snRNP U1, U2, U4, U5 et U6 ainsi que des protéines accessoires, notamment SF1 et U2AF.
Les sites d’épissage 5′ et 3′ sont situés aux jonctions exon-intron, et le site de branchement contenant une adénosine conservée se trouve en amont du site 3′ accepteur.
L’assemblage du spliceosome passe par les complexes E, A, B et C avant les réactions catalytiques d’épissage.
L’épissage alternatif est régulé par des protéines activatrices ou répresseuses qui se lient à des séquences cis-régulatrices de l’ARN, et la structure secondaire de l’ARN peut aussi influer sur le choix des exons.
Reconnaissance des sites, lasso intronique, ligation des exons
★ À maîtriser
Compléments
📌 La dégradation des ARNm permet de réguler rapidement la production de protéines, car leur élimination rapide rend possible une réponse rapide aux changements de transcription.
Dégradation rapide des ARNm → ajustement rapide de la production protéique
★ À maîtriser
🔄 Chaque cycle de PCR comprend :
La PCR nécessite une ADN polymérase thermotolérante, la Taq polymérase, identifiée chez la bactérie Thermus aquaticus et fonctionnant de façon optimale à 72 °C.
Compléments
📌 Les amorces de PCR sont généralement longues de 17 à 25 paires de bases, spécifiques de la séquence à amplifier et orientées de façon à permettre la synthèse d’ADN de 5′ vers 3′.
📐 Formule - La température d’hybridation approximative d’une amorce peut être estimée par , où A, T, G et C sont les nombres de ces bases dans l’amorce.
📌 Le Mg²⁺ est un cofacteur essentiel de la Taq polymérase et favorise l’hybridation de l’ADN; une concentration trop élevée peut augmenter les signaux non spécifiques.
Dénaturation → hybridation → polymérisation
ARN polymérases eucaryotes
| Polymérase | Produits principaux |
|---|---|
| ARN polymérase I | Précurseur des ARNr 28S, 18S et 5,8S |
| ARN polymérase II | Précurseurs des ARNm et majorité des petits ARN nucléaires et nucléolaires |
| ARN polymérase III | ARNr 5S, ARNt et plusieurs petits ARN nucléaires |
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1. Dans une cellule, plusieurs gènes sont transcrits ensemble à partir d’une même unité de transcription. Quelle description correspond à cette organisation chez les procaryotes ?
2. Lors de l’analyse d’un gène eucaryote de classe 2, quelle interprétation faut-il donner à ses exons et à ses introns ?
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Qu’est-ce qu’un gène, ou cistron ?
Un segment d’ADN constituant une unité d’expression.
Quelle particularité distingue les unités de transcription procaryotes et eucaryotes ?
Les procaryotes peuvent avoir des unités polycistroniques, tandis que les unités eucaryotes sont monocistroniques, sauf exception chez certains vertébrés.
Quel précurseur l’ARN polymérase I synthétise-t-elle ?
Le précurseur des ARNr 28S, 18S et 5,8S.
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