QCM : Transcription et maturation de l’ARN — 24 questions

Explication

Le génome comprend tout le matériel génétique porté par l’ADN, notamment les génomes nucléaire et mitochondrial. Le génome ne correspond pas aux protéines ni à l’ensemble des ARN produits par la cellule.

Explication

Un gène est une séquence nucléotidique située dans un fragment d’ADN et contenant l’information minimale pour produire un ARN. Une protéine ou une version particulière d’un gène ne constitue donc pas la définition d’un gène.

Explication

Le locus génomique désigne l’emplacement physique précis et stable d’un gène sur un chromosome, alors que les allèles sont les différentes versions de ce gène. Confondre la position du gène avec sa séquence variante inverse ces deux notions.

Explication

Un individu homozygote possède deux allèles identiques d’un même gène, tandis qu’un individu hétérozygote possède deux allèles différents. Le nombre de chromosomes ou de loci ne définit pas cette distinction.

Explication

L’ARN polymérase lit le brin matrice, aussi appelé brin lu, antisens ou brin moins, tout en synthétisant l’ARN de 5’ vers 3’. Le brin codant n’est pas le brin directement lu par l’enzyme.

Explication

Le promoteur proximal se situe juste en amont du site de transcription et mesure environ 100 nucléotides, alors que le promoteur distal peut être éloigné de plusieurs milliers de bases ou se trouver en aval du gène. Les promoteurs ne sont pas définis par leur appartenance à une région traduite ou à un intron.

Explication

Après le site +1, la région transcrite comprend une succession d’exons et d’introns, et la portion comprise entre ATG et le codon stop est traduite. Les promoteurs et les enhancers ne constituent pas l’organisation interne décrite ici.

Explication

L’ARN polymérase I synthétise les pré-ARN ribosomiques 5,8S, 18S et 28S dans le nucléole. Les pré-ARNm relèvent principalement de l’ARN polymérase II, tandis que les ARNt et l’ARNr 5S relèvent notamment de l’ARN polymérase III.

Explication

L’initiation suit l’assemblage progressif de TBP sur la TATA box, de TFIIB sur BRE, de l’ARN polymérase II associée à TFIIF, puis de TFIIE et TFIIH pour former le complexe PIC. L’incorporation successive des nucléotides appartient à l’élongation, non à la formation initiale du PIC.

Explication

TFIIH utilise son activité hélicase pour ouvrir les brins d’ADN grâce à l’hydrolyse de l’ATP et son activité kinase pour phosphoryler le domaine C-terminal de l’ARN polymérase. Les nucléotides ne sont pas ajoutés par TFIIH, mais par l’ARN polymérase.

Explication

Pendant l’élongation, un nucléotide triphosphate entre dans le site actif contenant deux ions Mg2+, s’ajoute à l’ARN par une liaison phosphodiester et l’hybride ADN-ARN atteint environ 9 nucléotides. La traduction par les ribosomes et la formation de liaisons peptidiques interviennent dans un autre processus.

Explication

Les facteurs généraux permettent une transcription minimale et basale, alors que les facteurs spécifiques peuvent augmenter ou diminuer le taux de transcription. Ils ne se définissent donc pas par des fonctions d’épissage, de dégradation de l’ARN ou de réplication de l’ADN.

Explication

La chromatine décondensée expose davantage l’ADN aux facteurs de transcription, ce qui facilite l’initiation transcriptionnelle. La chromatine condensée réduit au contraire cet accès, sans agir directement sur les introns ou la coiffe de l’ARN.

Explication

Un facteur d’activation peut recruter un complexe de remodelage ainsi que des chaperonnes capables d’éliminer ou de modifier les nucléosomes. La condensation et la conversion en ARN ne correspondent pas à ce mécanisme.

Explication

L’acétylation et la phosphorylation des histones favorisent la décondensation et l’activation transcriptionnelle. La désacétylation et la méthylation des cytosines sont plutôt associées à la condensation et à l’inhibition.

Explication

L’épigénétique concerne la transmission réversible et adaptative de profils d’expression génique sans modification de la séquence nucléotidique. Elle ne correspond donc ni à une mutation de l’ADN ni à une étape de traduction.

Explication

L’épissage retire les introns du pré-ARNm, alors que l’édition génétique modifie sa séquence nucléotidique. La coiffe et la queue polyA sont d’autres étapes de maturation, distinctes de ces deux mécanismes.

Explication

La coiffe 5’ protège l’extrémité de l’ARN contre certaines enzymes de dégradation et participe à la traduction. La protection de l’extrémité 3’ et l’élimination des introns relèvent d’autres mécanismes de maturation.

Explication

La queue polyA est ajoutée à l’extrémité 3’ après le clivage du pré-ARNm et contribue à la stabilité ainsi qu’à l’initiation de la traduction. Elle n’est pas une séquence d’uraciles ajoutée en 5’ et ne résulte pas de l’ajout d’introns.

Explication

Le spliceosome élimine les introns au cours de l’épissage et utilise de l’ATP pour fonctionner. La polyadénylation, l’édition et la pose de la coiffe interviennent dans d’autres aspects de la maturation du pré-ARNm.

Explication

La diversité des transcrits matures repose notamment sur plusieurs promoteurs, des choix d’épissage et des sites de polyadénylation. Les autres ensembles décrivent des processus cellulaires qui ne constituent pas les trois mécanismes indiqués.

Explication

Les promoteurs alternatifs correspondent à plusieurs régions d’initiation de la transcription et peuvent produire des ARN différents à partir d’un même gène. Les choix de sites en 3’ relèvent plutôt de la polyadénylation alternative.

Explication

La polyadénylation alternative exploite plusieurs signaux, parfois présents dans les introns, et peut modifier le dernier exon ainsi que la protéine produite. La modification du site d’initiation concerne plutôt les promoteurs alternatifs.

Explication

Le contrôle qualité de l’ARNm implique CBP à la coiffe, PABP à la queue polyA et EJC aux jonctions entre exons. Le spliceosome intervient dans l’épissage, mais il ne constitue pas à lui seul l’ensemble des éléments de contrôle qualité décrit ici.