QCM : Culture cellulaire et applications — 16 questions

Explication

La culture cellulaire correspond à la multiplication des cellules en culture. La cofluence désigne plutôt le moment où l’espace disponible est occupé, et non le processus de multiplication lui-même.

Explication

La culture primaire est la première culture obtenue après l’isolement des cellules, sur un support ou en suspension. Une culture issue d’un premier passage est une culture secondaire.

Explication

À la cofluence, l’espace disponible est occupé et les cellules doivent être transférées vers un autre flacon ou support par un passage. Cette étape ne correspond ni à une coculture ni à une immortalisation.

Explication

Une ligne cellulaire est une population homogène établie après de nombreuses divisions successives, avec une capacité théoriquement limitée de division. Une population obtenue juste après l’isolement correspond à une culture primaire.

Explication

La coculture associe simultanément plusieurs types cellulaires afin de reproduire des interactions observées in vivo. Une structure issue d’un seul type cellulaire correspond ici à un organoïde.

Explication

Dans une culture directe, les deux types cellulaires partagent le même compartiment et peuvent donc entrer en contact. Cette proximité rend cependant difficile leur récupération séparée, contrairement aux systèmes compartimentés.

Explication

Le milieu conditionné a été utilisé auparavant par le premier type cellulaire, puis celui-ci a été retiré ; les facteurs produits restent donc dans le milieu. Cette méthode évite le mélange direct des cellules.

Explication

Les cultures cellulaires trouvent des applications en recherche fondamentale, en médecine et dans l’industrie pharmaceutique. Les autres domaines proposés ne correspondent pas aux principaux domaines indiqués.

Explication

La thérapie génique implique une intervention sur le matériel génétique afin de traiter une maladie. Le dépistage génétique vise à détecter ou identifier une anomalie sans constituer en lui-même une intervention thérapeutique.

Explication

L’industrie pharmaceutique utilise les cultures cellulaires pour les études toxicologiques et pharmacologiques, ainsi que pour produire des substances thérapeutiques et des vaccins. Le dépistage génétique relève d’une application médicale distincte.

Explication

La culture cellulaire utilise notamment 37 °C, une humidité indiquée à 84 % et un pH de 7,4. Le contrôle de l’oxygène dépend des cellules cultivées et ne remplace pas ces paramètres de base.

Explication

La manipulation sous hotte, associée à l’emploi d’antibiotiques et d’antifongiques, contribue à préserver la stérilité du milieu. L’exposition à l’air ambiant augmente au contraire le risque de contamination.

Explication

Un support de culture peut être bidimensionnel ou tridimensionnel, mais il doit être adapté aux cellules cultivées. Un support en trois dimensions n’est donc pas automatiquement approprié à toutes les cellules.

Explication

La lyse détruit les cellules, qui ne subsistent alors que sous forme de fragments utilisables notamment pour le Western blot et la RT-PCR. L’imagerie et les tests fonctionnels relèvent plutôt de l’analyse de cellules vivantes.

Explication

Les cellules vivantes permettent l’imagerie, l’évaluation des fonctions et les tests enzymatiques. La coloration concerne plutôt les cellules fixes, tandis que le Western blot et la RT-PCR sont associés aux cellules lysées.

Explication

Les cellules fixes peuvent être étudiées par coloration, immunohistochimie ou immunocytochimie, hybridation in situ et CFM. Les tests fonctionnels et certaines mesures enzymatiques nécessitent au contraire des cellules vivantes.