QCM : Culture des cellules animales (20 questions)

Questions et réponses du QCM

1. Concernant les cellules et les tissus :

Les grandes familles comprennent les épithéliums, les tissus conjonctifs et musculaires, ainsi que le tissu nerveux.
La cellule constitue la plus petite unité vivante.
Un tissu est formé de cellules indifférenciées réunies sans association biologique.
Un tissu associe des cellules différenciées dans un ensemble fonctionnel et biologique.
La cellule représente un ensemble de tissus organisés en une association fonctionnelle et biologique.

Les grandes familles comprennent les épithéliums, les tissus conjonctifs et musculaires, ainsi que le tissu nerveux. · La cellule constitue la plus petite unité vivante. · Un tissu associe des cellules différenciées dans un ensemble fonctionnel et biologique.

Explication

La cellule est la plus petite unité vivante, tandis qu’un tissu rassemble des cellules différenciées formant une association fonctionnelle et biologique. Les quatre familles sont les épithéliums, les tissus conjonctifs, les tissus musculaires et le tissu nerveux ; la cellule n’est pas un ensemble de tissus et les tissus ne sont pas définis par des cellules indifférenciées.

2. Un entérocyte différencié est observé dans un tissu en renouvellement ; quelles propositions s’appliquent ?

Le renouvellement des tissus se poursuit tout au long de la vie grâce aux cellules souches.
Sa durée de vie moyenne est de deux à trois jours.
L’expression de protéines spécifiques reste identique aux stades de prolifération et de différenciation.
L’expression de protéines spécifiques varie avec le stade de prolifération ou de différenciation cellulaire.
Un entérocyte différencié appartient au tissu conjonctif.

Le renouvellement des tissus se poursuit tout au long de la vie grâce aux cellules souches. · Sa durée de vie moyenne est de deux à trois jours. · L’expression de protéines spécifiques varie avec le stade de prolifération ou de différenciation cellulaire.

Explication

La durée de vie moyenne d’un entérocyte différencié est de deux à trois jours, et les cellules souches contribuent au renouvellement continu des tissus. L’expression de protéines spécifiques varie selon le stade cellulaire, et l’entérocyte appartient à un épithélium, non à un tissu conjonctif.

3. Une équipe maintient des cellules hors de l’organisme pendant trente heures dans des conditions favorisant leur survie, leur prolifération et leur différenciation. À propos de cette culture :

La durée de maintien dépasse le seuil de vingt-quatre heures retenu pour la définition.
Un modèle de culture simplifié ne permet pas d’étudier les mécanismes d’action.
Le milieu contrôlé contribue à la reproductibilité des résultats obtenus.
Un maintien de vingt heures répond au seuil temporel de la définition de la culture cellulaire.
Les cultures peuvent servir aux essais de drogues et aux études de toxicologie des xénobiotiques.

La durée de maintien dépasse le seuil de vingt-quatre heures retenu pour la définition. · Le milieu contrôlé contribue à la reproductibilité des résultats obtenus. · Les cultures peuvent servir aux essais de drogues et aux études de toxicologie des xénobiotiques.

Explication

Trente heures dépassent le seuil de plus de vingt-quatre heures, avec les conditions de survie, prolifération et différenciation requises. Le contrôle des paramètres, notamment du milieu, favorise la reproductibilité ; les cultures servent aussi aux essais de drogues et à la toxicologie des xénobiotiques. Vingt heures ne dépassent pas le seuil, et les modèles simplifiés permettent bien d’étudier des mécanismes d’action.

4. Un programme cherche à traiter des patients, à réduire le recours aux animaux et à maîtriser ses dépenses. Quelles utilisations ou caractéristiques des cultures cellulaires sont pertinentes ?

L’évaluation des risques et des dommages relève des objectifs thérapeutiques des cultures cellulaires.
Leur utilisation peut contribuer à réduire le nombre d’animaux utilisés.
Les cultures cellulaires sont décrites comme ayant un coût relativement faible.
Une thérapie cellulaire peut mobiliser des cellules souches ou d’autres cellules cultivées.
La thérapie cellulaire se limite à l’emploi de cellules souches.

Leur utilisation peut contribuer à réduire le nombre d’animaux utilisés. · Les cultures cellulaires sont décrites comme ayant un coût relativement faible. · Une thérapie cellulaire peut mobiliser des cellules souches ou d’autres cellules cultivées.

Explication

La thérapie cellulaire peut faire appel à des cellules souches ou à d’autres cellules, et les cultures présentent un coût relativement faible. Elles peuvent aussi réduire l’utilisation d’animaux ; l’évaluation des risques et des dommages relève des objectifs éthiques, juridiques et législatifs, tandis que la thérapie cellulaire n’est pas limitée aux cellules souches.

5. Concernant les modèles in vitro et l’obtention des cellules :

La dissociation enzymatique peut employer le scalpel ou le ciseau stérile.
Les tranches d’organe préservent à la fois leurs structures et leurs fonctions.
Un prélèvement tissulaire peut fournir des cellules avec ou sans dissociation.
La culture primaire correspond à la culture initiale de cellules prélevées d’un tissu.
Les cellules en suspension préservent les structures tissulaires autant que les fonctions d’origine.

Les tranches d’organe préservent à la fois leurs structures et leurs fonctions. · Un prélèvement tissulaire peut fournir des cellules avec ou sans dissociation. · La culture primaire correspond à la culture initiale de cellules prélevées d’un tissu.

Explication

Les tranches d’organe conservent structures et fonctions, tandis qu’un prélèvement peut être dissocié ou non. La culture primaire est la culture initiale des cellules fraîchement prélevées ; le scalpel et le ciseau relèvent de la dissociation mécanique, non enzymatique.

6. Parmi les propositions suivantes concernant les cultures secondaires et les lignées primaires, la(les)quelle(s) est(sont) exacte(s) ?

La durée de vie d’une lignée cellulaire primaire est d’environ 50 divisions.
Une culture secondaire désigne la culture initiale de cellules prélevées d’un tissu.
Une culture secondaire correspond à la propagation d’une culture primaire.
Une culture peut demeurer indifférenciée pendant 30 à 50 divisions.
La propagation d’une culture primaire peut conduire à créer une lignée cellulaire.

La durée de vie d’une lignée cellulaire primaire est d’environ 50 divisions. · Une culture secondaire correspond à la propagation d’une culture primaire. · Une culture peut demeurer indifférenciée pendant 30 à 50 divisions. · La propagation d’une culture primaire peut conduire à créer une lignée cellulaire.

Explication

Une culture secondaire propage une culture primaire et peut conduire à la création d’une lignée. Les lignées primaires vivent environ 50 divisions, tandis que l’état indifférencié peut persister 30 à 50 divisions ; la culture initiale de cellules prélevées définit la culture primaire.

7. Dans une culture, les divisions cessent après une phase exponentielle et le milieu est épuisé. Quelle(s) proposition(s) est(sont) exacte(s) ?

Après cette phase, la croissance se poursuit sans repiquage ni mort cellulaire.
La phase de latence correspond à une période de divisions exponentielles.
Cette situation correspond à la phase stationnaire de la croissance cellulaire.
La phase stationnaire est associée à une augmentation de la prolifération.
La durée de latence dépend notamment du type cellulaire et du milieu utilisé.

Cette situation correspond à la phase stationnaire de la croissance cellulaire. · La durée de latence dépend notamment du type cellulaire et du milieu utilisé.

Explication

L’épuisement du milieu et l’arrêt de la prolifération caractérisent la phase stationnaire ; la durée de latence dépend du type cellulaire, du milieu et de la densité. La phase de latence ne comporte pas de division, et la croissance ultérieure peut reprendre après repiquage ou aboutir à la mort cellulaire.

8. Au cours d’une phase exponentielle, une culture présente un temps de doublement de 24 heures. Cochez la (les) proposition(s) exacte(s) :

Le temps de doublement varie selon le type cellulaire considéré.
La phase exponentielle peut présenter un temps de doublement de 4 heures.
Un temps de doublement de 60 jours appartient à l’intervalle indiqué.
Le temps de doublement indiqué est indépendant du type cellulaire.
Un temps de doublement de 24 heures appartient à l’intervalle observé.

Le temps de doublement varie selon le type cellulaire considéré. · La phase exponentielle peut présenter un temps de doublement de 4 heures. · Un temps de doublement de 24 heures appartient à l’intervalle observé.

Explication

Le temps de doublement varie selon le type cellulaire et se situe entre 4 et 48 heures : 24 heures et 4 heures sont donc compatibles, tandis que 60 jours ne se trouve pas dans cet intervalle. La durée indiquée dépend du type cellulaire.

9. Dans un laboratoire de culture cellulaire, quel matériel est prévu pour les opérations décrites ?

Les congélateurs à −20 °C et −80 °C font partie du matériel de conservation.
Le four Pasteur et l’autoclave sont indiqués pour assurer la stérilisation du matériel.
Le microscope inversé à contraste de phase figure parmi le matériel d’observation nécessaire.
Le réfrigérateur et le conteneur d’azote liquide servent principalement à stériliser les instruments.
Le four Pasteur et l’autoclave constituent le matériel prévu pour la conservation des cellules.

Les congélateurs à −20 °C et −80 °C font partie du matériel de conservation. · Le four Pasteur et l’autoclave sont indiqués pour assurer la stérilisation du matériel. · Le microscope inversé à contraste de phase figure parmi le matériel d’observation nécessaire.

Explication

Le four Pasteur et l’autoclave sont des équipements de stérilisation, tandis que les congélateurs font partie du matériel de conservation. Le microscope inversé à contraste de phase sert à l’observation ; le réfrigérateur et l’azote liquide conservent les cellules, et non les instruments par stérilisation.

10. Une salle de culture doit être préparée pour l’incubation et le travail stérile. Parmi les propositions suivantes, lesquelles sont exactes ?

Le niveau de confinement contribue à déterminer les règles concernant déchets et manipulations.
La reconstitution des conditions in vivo prend en compte température, pH, humidité et milieu de culture.
Les conditions d’incubation indiquées associent 37 °C, 5 % de CO₂ et une atmosphère humide.
L’environnement contrôlé de la salle peut comporter des filtres HEPA, un sas et des pressions variables.
Le PSM est une enceinte de travail stérile dont l’air passe par des filtres absolus.

Le niveau de confinement contribue à déterminer les règles concernant déchets et manipulations. · La reconstitution des conditions in vivo prend en compte température, pH, humidité et milieu de culture. · Les conditions d’incubation indiquées associent 37 °C, 5 % de CO₂ et une atmosphère humide. · L’environnement contrôlé de la salle peut comporter des filtres HEPA, un sas et des pressions variables. · Le PSM est une enceinte de travail stérile dont l’air passe par des filtres absolus.

Explication

L’incubation indiquée combine 37 °C, 5 % de CO₂ et une atmosphère humide. L’organisation peut inclure filtres HEPA, sas et pressions variables ; le PSM filtre l’air par des filtres absolus, et les conditions in vivo ainsi que le niveau de confinement déterminent respectivement les paramètres à considérer et certaines règles de travail.

11. Pour choisir un milieu destiné à des cellules de mammifères ou à des cellules CHO, cochez la (les) proposition(s) exacte(s) :

Ham’s F12 convient aux cellules CHO et contient davantage de Ca²⁺ que le DMEM.
Un milieu de culture apporte notamment des acides aminés, des vitamines et une source de carbone.
Le DMEM est un milieu riche adapté à la majorité des cellules de mammifères.
Le DMEM est principalement adapté aux cellules CHO plutôt qu’aux cellules de mammifères.
Les milieux de culture sont isotoniques, nutritifs et non stériles avant leur emploi.

Un milieu de culture apporte notamment des acides aminés, des vitamines et une source de carbone. · Le DMEM est un milieu riche adapté à la majorité des cellules de mammifères.

Explication

Les milieux apportent notamment acides aminés, vitamines et source de carbone, et le DMEM riche convient à la majorité des cellules de mammifères. Ham’s F12 convient aux CHO mais est moins riche en Ca²⁺ que le DMEM ; les milieux décrits sont stériles, et l’adaptation aux CHO caractérise Ham’s F12 plutôt que le DMEM.

12. Concernant les facteurs de croissance et les sérums utilisés en culture cellulaire, quelles sont les réponses exactes ?

Les facteurs de croissance sont des lipides impliqués dans le contrôle de la division cellulaire.
Le sérum de veau fœtal est davantage utilisé pour différencier les cellules musculaires.
Les facteurs de croissance contrôlent la division, mais pas la différenciation ni la survie.
Les facteurs de croissance sont des protéines messagères contrôlant division, différenciation et survie cellulaires.
Le sérum de cheval est le sérum le plus utilisé en culture cellulaire.

Les facteurs de croissance sont des protéines messagères contrôlant division, différenciation et survie cellulaires.

Explication

Les facteurs de croissance sont des protéines messagères qui participent au contrôle de la division, de la différenciation et de la survie cellulaires. Le sérum de veau fœtal est le plus utilisé en culture, tandis que le sérum de cheval est davantage associé à la différenciation musculaire ; les facteurs de croissance ne sont pas des lipides et leur rôle inclut aussi différenciation et survie.

13. Une culture cellulaire doit franchir le point de restriction du cycle. Concernant les facteurs de croissance impliqués :

Le point de restriction peut être franchi sans facteurs de croissance.
Le franchissement du point de restriction requiert la présence de facteurs de croissance.
Les facteurs de la famille de l’insuline cités sont IGF-1 et IGF-2.
Les familles citées comprennent les PDGF, VEGF, EGF, TGF et FGF.
La famille de l’insuline citée comprend IGF-1 et IGF-3.

Le franchissement du point de restriction requiert la présence de facteurs de croissance. · Les facteurs de la famille de l’insuline cités sont IGF-1 et IGF-2. · Les familles citées comprennent les PDGF, VEGF, EGF, TGF et FGF.

Explication

Les familles citées incluent les PDGF, VEGF, EGF, TGF et FGF, ainsi que les facteurs de la famille de l’insuline IGF-1 et IGF-2. Le franchissement du point de restriction nécessite des facteurs de croissance, et la variante IGF-3 ne correspond pas à la famille citée.

14. Pour choisir des supports adaptés à une culture de cellules adhérentes, quelles propositions sont exactes ?

Les tubes de culture ont notamment des contenances de 25 ou 75 ml.
Les formats disponibles comprennent des flacons, des boîtes et des plaques multipuits.
Les plaques multipuits existent notamment en formats de 6, 24 et 96 puits.
Les supports peuvent être traités ou non pour favoriser l’adhérence cellulaire.
Les boîtes de culture présentent des diamètres compris entre 15 et 150 mm.

Les formats disponibles comprennent des flacons, des boîtes et des plaques multipuits. · Les plaques multipuits existent notamment en formats de 6, 24 et 96 puits. · Les supports peuvent être traités ou non pour favoriser l’adhérence cellulaire.

Explication

Les cellules adhérentes peuvent être cultivées dans des flacons, boîtes ou plaques, entre autres supports, et les surfaces peuvent être traitées pour l’adhérence. Les plaques comprennent notamment les formats de 6, 12, 24, 48 ou 96 puits; les boîtes mesurent 35 à 150 mm et les tubes peuvent contenir 15 ou 50 ml.

15. Une culture 2D présente une adhérence insuffisante, notamment pour des cellules nerveuses. Quelles propositions sont exactes ?

La polylysine apporte des charges négatives à la surface du support.
Le support d’attache usuel en culture 2D est un plastique chargé négativement.
La laminine est citée comme traitement destiné à charger positivement la surface.
Les éléments matriciels laissés par d’autres cellules diminuent l’adhérence.
Un coating au collagène natif peut améliorer l’adhérence de certaines cellules.

Le support d’attache usuel en culture 2D est un plastique chargé négativement. · Un coating au collagène natif peut améliorer l’adhérence de certaines cellules.

Explication

La culture 2D utilise un plastique chargé négativement, et un coating au collagène peut améliorer l’adhérence. La polylysine apporte des charges positives; la laminine est un agent de coating, tandis que les éléments matriciels laissés par d’autres cellules peuvent également favoriser l’adhérence.

16. Concernant la conservation des cellules par congélation :

La congélation permet de conserver des cellules à long terme.
Le choc thermique entraîne des altérations identiques de tous les composants membranaires.
Le choc thermique peut provoquer des altérations différentielles des composants membranaires.
Le choc thermique critique se situe dans un intervalle allant de 15 à 0 °C.
La congélation sert principalement à conserver les cellules à court terme.

La congélation permet de conserver des cellules à long terme. · Le choc thermique peut provoquer des altérations différentielles des composants membranaires. · Le choc thermique critique se situe dans un intervalle allant de 15 à 0 °C.

Explication

La congélation sert au stockage cellulaire à long terme. Le choc thermique survient dans l’intervalle critique de 15 à 0 °C et provoque des effets mécaniques ainsi que des altérations différentielles des composants membranaires; les effets ne sont donc pas identiques pour tous.

17. Une équipe compare trois réglages de conservation cellulaire. Concernant les températures indiquées :

Une armoire HAIER est indiquée à −150 °C pour conserver les cellules.
La température de −170 °C est attribuée à une armoire HAIER.
L’autre réglage HAIER mentionné pour la conservation est de −80 °C.
L’armoire HAIER réglée à −80 °C correspond à la température la plus basse.
La conservation dans l’azote liquide est indiquée à −170 °C.

Une armoire HAIER est indiquée à −150 °C pour conserver les cellules. · L’autre réglage HAIER mentionné pour la conservation est de −80 °C. · La conservation dans l’azote liquide est indiquée à −170 °C.

Explication

L’azote liquide est indiqué à −170 °C, et les deux armoires HAIER sont indiquées à −80 °C et −150 °C. Ainsi, −80 °C n’est pas la température la plus basse, et −170 °C correspond à l’azote liquide, non à une armoire.

18. Concernant les contaminants cellulaires et la détection des mycoplasmes, quelles propositions sont exactes ?

La détection des mycoplasmes repose sur le dosage de l’activité enzymatique de la pénicilline.
Les contaminations croisées par d’autres cellules sont classées parmi les contaminants biologiques.
La PCR peut rechercher les mycoplasmes à l’aide d’une sonde spécifique.
Les contaminants biologiques comprennent notamment les bactéries, les virus, les levures et les champignons.
La coloration au DAPI ou au Hoechst peut être suivie d’une observation microscopique.

La PCR peut rechercher les mycoplasmes à l’aide d’une sonde spécifique. · Les contaminants biologiques comprennent notamment les bactéries, les virus, les levures et les champignons. · La coloration au DAPI ou au Hoechst peut être suivie d’une observation microscopique.

Explication

Les bactéries, virus, levures et champignons sont des contaminants biologiques ; les contaminations croisées constituent une catégorie distincte. La PCR avec sonde spécifique et la coloration au DAPI ou au Hoechst suivie d’une observation microscopique sont des méthodes de détection ; l’activité enzymatique recherchée est celle de l’adénosine phosphorylase, non de la pénicilline.

19. Dans une culture contaminée, plusieurs altérations cellulaires sont observées. Parmi les propositions suivantes concernant les effets possibles, laquelle ou lesquelles sont exactes ?

Une contamination peut accélérer la différenciation des cellules cultivées.
Les contaminations peuvent renforcer l’adhérence des cellules à leur support.
Une carence en acides aminés peut réduire la croissance des cellules en culture.
Une contamination peut stimuler la croissance cellulaire par carence en acides aminés.
Les cellules contaminées peuvent se détacher de leur support de culture.

Une carence en acides aminés peut réduire la croissance des cellules en culture. · Les cellules contaminées peuvent se détacher de leur support de culture.

Explication

Les contaminations peuvent réduire la croissance, notamment par carence en acides aminés, inhiber la différenciation et détacher les cellules de leur support. Elles ne stimulent donc pas la croissance par cette carence et ne renforcent pas l’adhérence.

20. Lors d’une enquête sur une contamination de culture, quelles sources potentielles faut-il envisager ?

Les aérosols présents pendant les manipulations peuvent être une source de contamination.
Les incubateurs constituent les seuls outils pouvant transmettre une contamination.
Le sérum et la trypsine font partie des produits susceptibles d’être en cause.
Les milieux de culture ne sont pas considérés comme des sources possibles de contamination.
L’expérimentateur peut contribuer à l’introduction d’une contamination dans la culture.

Les aérosols présents pendant les manipulations peuvent être une source de contamination. · Le sérum et la trypsine font partie des produits susceptibles d’être en cause. · L’expérimentateur peut contribuer à l’introduction d’une contamination dans la culture.

Explication

Les milieux et produits utilisés, dont le sérum et la trypsine, les outils, les aérosols et l’expérimentateur sont des sources possibles. Les outils ne se limitent pas aux incubateurs, et les milieux de culture sont bien concernés.

Révisez avec les flashcards

Mémorisez les réponses avec 79 flashcards sur Culture des cellules animales.

Qu’est-ce qu’une cellule ?

La plus petite unité vivante.

Qu’est-ce qu’un tissu ?

Un ensemble de cellules différenciées formant une association fonctionnelle et biologique.

Quelle est la première étape de l’approche méthodologique d’étude des tissus ?

Mettre en place des modèles d’étude in vitro par culture cellulaire.

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Approfondir avec la fiche

Consultez la fiche de révision complète sur Culture des cellules animales.

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