UVT : Universalité, Vecteurs, Totipotence
Identifier → isoler → construire → transférer → régénérer → évaluer → croiser
★ À maîtriser
La coculture d’explants végétaux avec une suspension d’Agrobacterium transformé permet de transformer les cellules végétales, qui sont ensuite sélectionnées sur un milieu où seules les cellules transformées se développent.
La biolistique bombarde les tissus végétaux avec des microparticules enrobées d’ADN.
Compléments
Agrobacterium transfère biologiquement, la biolistique transfère physiquement
★ À maîtriser
📌 L’étude des effets génomiques de la transgenèse fait partie de l’évaluation des risques prévue par la réglementation européenne.
Compléments
Les insertions aléatoires peuvent provoquer des délétions, des insertions d’ADN, des translocations et des duplications.
La directive 2001/18 encadre l’utilisation des OGM en milieu confiné et leur dissémination volontaire dans l’environnement.
Insertion aléatoire → remaniements génomiques → évaluation des risques
★ À maîtriser
Compléments
Homologie pour HR, absence d’homologie pour NHEJ
📐 Formule — L’efficacité de ciblage vérifie .
Insertion aléatoire ≠ insertion ciblée
★ À maîtriser
Physcomitrella patens possède une dominance du stade haploïde, un cycle de développement rapide de 10 à 12 semaines et des capacités régénératives à partir de protoplastes ou d’explants.
Chez Physcomitrella patens, le double mutant rad51-1/2 est incompétent pour le ciblage génique, alors que les mutants simples ne sont pas affectés dans l’intégration aléatoire de l’ADN ni dans le ciblage génique.
Compléments
Une mousse haploïde régénérable, facile à sélectionner
Les cassures double-brin augmentent de 10 à 100 fois la recombinaison homologue et la fréquence du ciblage génique chez les plantes.
Les Site Directed Nucleases comprennent:
Chaque doigt de zinc reconnaît spécifiquement 3 paires de bases, et FokI doit fonctionner en dimère avec deux ZFN encadrant le site cible.
Méganucléase → ZFN → TALEN → CRISPR/Cas9
Les SDN permettent la mutagenèse ciblée, l’insertion ciblée et le ciblage génique par induction de cassures double-brin au locus choisi.
Les nickases produisent des cassures simple-brin et peuvent réduire les effets hors-cible, car les cassures simple-brin sont religuées sans mutation et leur utilisation en paire augmente la longueur d’hybridation à la cible.
Casser pour modifier, nickaser pour sécuriser, dCas9 pour réguler
★ À maîtriser
Le SDN-1 laisse la cellule réparer la cassure double-brin par recombinaison illégitime sans ADN donneur, ce qui crée des mutations ponctuelles ou des délétions et permet un knock-out.
Le SDN-2 fournit une cassette presque identique au locus cible mais comportant quelques bases modifiées, dont l’intégration par recombinaison homologue permet un remplacement d’allèle.
Le SDN-3 insère un transgène au niveau de la cassure, soit par recombinaison homologue avec des régions homologues, soit par recombinaison illégitime dirigée sans région homologue.
Compléments
SDN-1 : mutation, SDN-2 : modification, SDN-3 : insertion
★ À maîtriser
Les groupes de NGT sont: les NGT produisant des cassures double-brin, les NGT produisant des cassures simple-brin ou aucune cassure, les NGT induisant des modifications épigénétiques, les NGT agissant sur les ARN transcrits
Une plante NGT-1 est considérée comme équivalente à une plante conventionnelle lorsqu’elle diffère de la plante initiale par au maximum 20 modifications génétiques par génome monoploïde.
📌 Pour la mutagenèse ciblée d’une plante NGT-1, les modifications peuvent être une substitution ou une insertion de 20 nucléotides au maximum, une délétion d’un nombre quelconque de nucléotides, avec au plus trois modifications par séquence codante.
📌 La cisgenèse NGT-1 exige que la séquence modifiée existe dans le pool génique de l’espèce et qu’elle n’interrompe pas un gène endogène.
Compléments
NGT-1 équivalente au conventionnel, NGT-2 soumise à un traitement distinct
★ À maîtriser
Les limites concernent: l’identification des gènes et allèles d’intérêt, la transformation des lignées élites et des espèces mineures, l’efficacité du knock-in, la réglementation européenne, la propriété intellectuelle, l’acceptation publique, les marchés internationaux
Les applications agronomiques comprennent: la résistance aux maladies, la tolérance aux herbicides, la réduction des composés antinutritionnels et des allergènes, l’amélioration de la valeur nutritionnelle, la prolongation de la durée de conservation, l’amélioration du rendement, l’amélioration de la conversion de la biomasse en biocarburants
Compléments
| Voie | Homologie requise | Résultat principal |
|---|---|---|
| Recombinaison homologue | Homologie de séquence | Échange et restauration de l’information génétique |
| SSA | Au moins 30 paires de bases | Grandes délétions sans insertion de nucléotides |
| MMEJ | Micro-homologie de 5 à 25 paires de bases | Délétions et insertions fréquentes |
| NHEJ | Aucune homologie | Insertions ou délétions de quelques paires de bases |
| Type | ADN donneur | Résultat |
|---|---|---|
| SDN-1 | Absent | Mutations ou délétions, knock-out |
| SDN-2 | Cassette presque identique au locus | Remplacement d’allèle |
| SDN-3 | Cassette avec ou sans homologie | Insertion ciblée d’un transgène |
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1. Pourquoi un gène bactérien peut-il être utilisé pour produire une protéine dans une cellule végétale ?
2. Quel est le rôle principal d’un vecteur de transfert en transgenèse végétale ?
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Qu'impose l'universalité du code génétique pour l'utilisation d'un gène ?
On peut utiliser la séquence d'un gène quelle que soit son origine.
Quel est le rôle d'un vecteur de transfert en transgenèse végétale ?
Il fait pénétrer un fragment d'ADN dans la cellule et le génome végétal.
Par quelles méthodes un vecteur de transfert peut-il introduire l'ADN ?
Par des méthodes biologiques, physiques ou chimiques.
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