QCM : Antibiogramme et sensibilité bactérienne (21 questions)

Explication

L’antibiogramme évalue la sensibilité aux antibiotiques une fois la bactérie isolée et identifiée. La culture sert à faire croître les bactéries, l’analyse du prélèvement n’est pas cet examen de sensibilité, et le test de synergie évalue une association d’antimicrobiens.

Explication

Les techniques de biologie moléculaire peuvent détecter des gènes ou des mutations de résistance connus. L’approche semi-quantitative et l’approche qualitative décrivent d’autres formes d’antibiogramme, tandis que le test de synergie examine l’efficacité d’une association d’antimicrobiens.

Explication

Un antibiotique peut être produit par des microorganismes ou obtenu par synthèse chimique ; il possède une activité antibactérienne spécifique à faible dose. L’activité antivirale, l’origine exclusivement humaine et l’absence de spécificité ne correspondent pas à cette définition.

Explication

Un effet bactériostatique ralentit ou arrête la croissance bactérienne sans que cela signifie que les bactéries sont tuées. L’effet bactéricide désigne leur destruction, et l’absence d’activité ne correspond pas à un ralentissement observé.

Explication

La catégorie clinique dépend des posologies envisagées et du niveau d’exposition de la bactérie à l’antibiotique au site infectieux. La vitesse de destruction relève d’un autre aspect de l’activité, tandis que la toxicité et la famille chimique ne définissent pas cette catégorie.

Explication

La catégorie S correspond à une forte probabilité de succès thérapeutique lorsque l’antibiotique est administré à dose usuelle. SFE implique une forte exposition, R prédit un risque élevé d’échec, et bactéricide désigne un effet qui tue les bactéries.

Explication

La catégorie R indique une forte probabilité d’échec thérapeutique même à la posologie maximale recommandée. S correspond au succès probable à dose usuelle, tandis que SFE suppose une probabilité élevée de succès sous forte exposition.

Explication

La CMI est la plus faible concentration qui empêche toute culture visible et correspond à un effet bactériostatique. La CMB se définit par la faible proportion de bactéries survivantes, et non par la seule absence de croissance visible.

Explication

La méthode de référence utilise une même quantité de bactéries dans des tubes de bouillon à concentrations croissantes, suivie de 18 heures d’incubation à 35 °C; la CMI est la plus faible concentration sans croissance visible. Les autres démarches modifient l’inoculum ou le critère de lecture.

Explication

La méthode standard par diffusion est réalisée sur gélose Mueller-Hinton selon des paramètres standardisés. La gélose au sang est un milieu enrichi, le bouillon est liquide et la gélose sélective répond à un autre objectif.

Explication

Le milieu doit permettre la croissance de nombreuses bactéries, ne pas contenir d’inhibiteurs des antibiotiques et avoir un pH compris entre 7,2 et 7,4. L’option avec inhibiteurs méconnaît leur absence requise, celle à pH 6,8 sort de l’intervalle et celle à croissance limitée ne satisfait pas le critère de croissance.

Explication

L’antibiotique se solubilise dans l’eau de la gélose, diffuse d’abord en profondeur puis latéralement, et sa concentration maximale se trouve au niveau du disque. L’ordre inversé confond les étapes, le maximum périphérique déplace le gradient et l’absence de diffusion en profondeur omet la première étape.

Explication

La suspension est préparée en eau physiologique stérile à partir d’une culture jeune et pure, ajustée à une densité précise au densitomètre, puis ensemencée dans les 15 minutes. L’ajustement visuel ne remplace pas le densitomètre, le milieu nutritif n’est pas le diluant indiqué et 20 minutes dépasse le délai.

Explication

Les concentrations critiques reposent sur des données pharmacologiques, microbiologiques et cliniques et permettent de classer une souche en sensible, sensible à forte exposition ou résistante. Les données microbiologiques seules et pharmacologiques seules omettent des fondements, tandis que le diamètre sert à estimer la CMI plutôt qu’à constituer à lui seul la base des seuils.

Explication

Une souche est sensible lorsque sa CMI est inférieure ou égale à la concentration critique inférieure : ici, 2 mg/L est égal au seuil. La catégorie SFE concerne une CMI strictement supérieure au seuil inférieur, tandis que la résistance dépend du dépassement du seuil supérieur.

Explication

La catégorie SFE correspond à une CMI supérieure à la concentration critique inférieure et inférieure ou égale à la concentration critique supérieure ; 1 < 3 ≤ 4. La catégorie sensible s’arrête au seuil inférieur et la résistance exige une CMI strictement supérieure au seuil supérieur.

Explication

Une souche est résistante lorsque sa CMI est supérieure à la concentration critique supérieure ; 9 mg/L dépasse 8 mg/L. La catégorie SFE s’applique jusqu’au seuil supérieur inclus, et la catégorie sensible est définie par le seuil inférieur.

Explication

La ZIT correspond à une plage proche des valeurs critiques où la mesure est peu reproductible et peut conduire à une erreur de catégorisation clinique. Une résistance ou une sensibilité confirmée ne peut pas être déduite de cette seule situation, et l’absence de croissance n’est pas le problème décrit.

Explication

Après le signalement « CMI sur demande », le clinicien peut tenir compte du type de prélèvement, du nombre d’antibiotiques actifs restants et de la place de l’antibiotique dans l’arsenal thérapeutique. Une décision automatique du laboratoire ou une décision fondée sur la seule reproductibilité ne reprend pas ces critères.

Explication

L’antibiogramme semi-quantitatif par E-test permet une détermination directe de la CMI. La biologie moléculaire détecte des gènes ou mutations, tandis qu’un antibiogramme qualitatif ou un test de synergie ne correspond pas à cette méthode de détermination directe.

Explication

La présence de mecA chez S. aureus indique une résistance à l’oxacilline et conduit à considérer le microorganisme comme résistant à la plupart des bêta-lactamines, quels que soient les résultats de l’antibiogramme. Se fier au résultat phénotypique favorable ou limiter l’interprétation à l’oxacilline néglige cette portée.