QCM : Antibiotiques : spectres et usages (31 questions)

Questions et réponses du QCM

1. Dans un service hospitalier, des échanges génétiques entre bactéries, une forte utilisation d’antibiotiques et des transmissions entre patients sont observés. Quel phénomène ces facteurs contribuent-ils à favoriser ?

La diminution des échanges génétiques
La sélection de résistances bactériennes
L’élimination des bactéries résistantes
La synthèse de nouveaux peptidoglycanes

La sélection de résistances bactériennes

Explication

Les échanges génétiques, la pression antibiotique et la transmission croisée contribuent ensemble à la sélection de résistances bactériennes. La synthèse du peptidoglycane concerne la paroi, la multiplication n’explique pas à elle seule cette sélection, et la transmission croisée ne signifie pas l’élimination des résistances.

2. Une culture bactérienne double en nombre à chaque génération, et une génération dure 20 minutes. Combien de temps faut-il pour accomplir trois générations ?

60 minutes
20 minutes
80 minutes
40 minutes

60 minutes

Explication

Chaque génération dure 20 minutes : trois générations prennent donc 3×20=603 \times 20 = 60 minutes. Les durées de 20 ou 40 minutes omettent une ou deux générations, tandis que 80 minutes ajoute une génération.

3. Quelle propriété du peptidoglycane explique son importance dans la paroi bactérienne ?

Il donne forme et structure à chaque espèce bactérienne.
Il relie les chaînes par l’action d’une enzyme.
Il détermine seul la coloration de Gram de chaque espèce.
Il forme les chaînes polysaccharidiques de la paroi.

Il donne forme et structure à chaque espèce bactérienne.

Explication

Le peptidoglycane est un polymère complexe qui donne forme et structure à chaque espèce bactérienne. La coloration de Gram reflète notamment l’organisation de la paroi, tandis que la formation et la liaison des chaînes relèvent de fonctions enzymatiques.

4. Une bactérie possède deux feuillets de peptidoglycane, qui représentent 8 % de sa paroi. À quel groupe correspond le mieux cette structure ?

À un groupe dont la paroi ne contient pas de peptidoglycane
Au groupe des bactéries à Gram négatif
Au groupe des bactéries à Gram positif
À un groupe intermédiaire entre Gram positif et Gram négatif

Au groupe des bactéries à Gram négatif

Explication

Les bactéries à Gram négatif possèdent de un à deux feuillets, représentant 5 à 10 % de leur paroi, ce qui correspond aux données du cas. Le Gram positif présente jusqu’à 40 feuillets et environ 50 % de la paroi en peptidoglycane ; les autres choix décrivent une catégorie non étayée ou l’absence de peptidoglycane.

5. Quelle cible moléculaire est visée par les bêta-lactamines dans la bactérie ?

Les chaînes polysaccharidiques
Le peptidoglycane de la paroi
Les protéines liant la pénicilline (PLP)
Les autolysines bactériennes

Les protéines liant la pénicilline (PLP)

Explication

Les bêta-lactamines ciblent les protéines liant la pénicilline (PLP), des enzymes impliquées dans la synthèse du peptidoglycane. Le peptidoglycane est le produit de cette synthèse, tandis que les autolysines et les chaînes polysaccharidiques ne sont pas la cible moléculaire désignée.

6. Une bêta-lactamine hydrophile atteint sa cible dans une bactérie à Gram négatif : quel trajet et quel mode de fixation caractérisent son action ?

Elle traverse le peptidoglycane, atteint l’espace périplasmique et se fixe de manière réversible aux PLP.
Elle traverse le peptidoglycane, atteint l’espace périplasmique et se fixe de manière covalente aux PLP.
Elle atteint l’espace périplasmique, traverse ensuite le peptidoglycane et se fixe de manière covalente aux PLP.
Elle traverse la membrane externe, atteint le cytoplasme et se fixe de manière covalente aux PLP.

Elle traverse le peptidoglycane, atteint l’espace périplasmique et se fixe de manière covalente aux PLP.

Explication

Les bêta-lactamines hydrophiles traversent le peptidoglycane, gagnent l’espace périplasmique et s’y fixent de façon covalente aux PLP. Inverser le trajet, remplacer la liaison covalente par une liaison réversible ou placer la cible dans le cytoplasme altère ce mécanisme.

7. Après la fixation d’une bêta-lactamine aux PLP, quelle succession d’effets explique la mort bactérienne ?

L’activation des autolysines entraîne une bactériostase, puis l’inhibition du peptidoglycane provoque la bactéricidie.
L’inhibition de la synthèse du peptidoglycane provoque directement la bactéricidie, puis les autolysines entraînent la bactériostase.
La reprise de synthèse du peptidoglycane entraîne une bactériostase, puis l’activation des autolysines provoque la bactéricidie.
L’inhibition de la synthèse du peptidoglycane entraîne une bactériostase, puis l’activation des autolysines provoque la bactéricidie.

L’inhibition de la synthèse du peptidoglycane entraîne une bactériostase, puis l’activation des autolysines provoque la bactéricidie.

Explication

La fixation aux PLP inhibe d’abord la synthèse du peptidoglycane et entraîne une bactériostase; l’activation ultérieure des autolysines conduit à la bactéricidie. L’inversion des étapes, la bactéricidie attribuée à la seule inhibition ou la reprise de synthèse ne correspondent pas à cette séquence.

8. Laquelle de ces catégories appartient à la famille des pénames ?

Les monobactames, comme l’aztréonam
Les carbapénèmes, comme l’imipénème
Les amidinopénicillines, comme le mécillinam
Les céphalosporines, comme le céfotaxime

Les amidinopénicillines, comme le mécillinam

Explication

Les pénames comprennent notamment les pénicillines G, M et A, les amidinopénicillines comme le mécillinam, ainsi que les carboxypénicillines et les uréidopénicillines. Les céphalosporines, les monobactames et les carbapénèmes sont d’autres familles de bêta-lactamines.

9. Un patient doit recevoir une pénicilline G ou V pour une infection à tréponème. Quelle caractéristique de leur spectre est pertinente, malgré leur sensibilité aux pénicillinases ?

Elles agissent sur les tréponèmes et résistent aux pénicillinases.
Elles agissent sur les tréponèmes et couvrent aussi les entérocoques.
Elles agissent sur les tréponèmes et couvrent aussi les bactéries à Gram positif.
Elles agissent sur les tréponèmes et couvrent aussi les staphylocoques sensibles.

Elles agissent sur les tréponèmes et couvrent aussi les bactéries à Gram positif.

Explication

Les pénicillines G et V agissent sur les tréponèmes et couvrent les bactéries à Gram positif, mais elles sont sensibles aux pénicillinases. L’activité sur les staphylocoques sensibles caractérise les pénicillines M, celle sur les entérocoques les pénicillines A, et la résistance aux pénicillinases contredit le profil indiqué.

10. Un isolat d’entérocoque est évalué pour un traitement par pénicilline A. Quel profil de spectre et de résistance doit-on prendre en compte ?

Couverture des bactéries à Gram positif, dont les entérocoques, avec sensibilité aux pénicillinases et activité possible sur des bactéries à Gram négatif résistantes.
Couverture des bactéries à Gram positif, dont les entérocoques, avec sensibilité aux pénicillinases et absence d’activité sur les bactéries à Gram négatif.
Couverture des staphylocoques sensibles, sans activité sur les entérocoques, avec sensibilité aux pénicillinases et activité possible sur des bactéries à Gram négatif résistantes.
Couverture des bactéries à Gram positif, dont les entérocoques, avec résistance aux pénicillinases et activité possible sur des bactéries à Gram négatif résistantes.

Couverture des bactéries à Gram positif, dont les entérocoques, avec sensibilité aux pénicillinases et activité possible sur des bactéries à Gram négatif résistantes.

Explication

Les pénicillines A couvrent les bactéries à Gram positif, y compris les entérocoques, sont sensibles aux pénicillinases et peuvent couvrir des bactéries à Gram négatif, malgré des résistances naturelles ou acquises liées aux bêta-lactamases. La résistance aux pénicillinases, l’exclusion des entérocoques ou l’absence d’activité sur les bactéries à Gram négatif déforme ce profil.

11. Une infection est due à un staphylocoque sensible et l’on envisage l’oxacilline. Quel spectre correspond aux pénicillines M ?

Activité contre les staphylocoques sensibles, faible sur les streptocoques et présente sur les entérocoques et les bacilles à Gram négatif.
Activité contre les staphylocoques sensibles, importante sur les streptocoques et nulle sur les entérocoques et les bacilles à Gram négatif.
Activité contre les staphylocoques sensibles, faible sur les streptocoques et nulle sur les entérocoques et les bacilles à Gram négatif.
Activité contre les staphylocoques sensibles, faible sur les streptocoques, nulle sur les entérocoques et présente sur les bacilles à Gram négatif.

Activité contre les staphylocoques sensibles, faible sur les streptocoques et nulle sur les entérocoques et les bacilles à Gram négatif.

Explication

L’oxacilline et la cloxacilline sont des pénicillines M utilisées contre les staphylocoques sensibles; leur activité est faible sur les streptocoques et nulle sur les entérocoques et les bacilles à Gram négatif. L’activité sur les entérocoques évoque plutôt les pénicillines A, tandis qu’une activité importante sur les streptocoques ou présente sur les bacilles à Gram négatif surestime le spectre des pénicillines M.

12. Un laboratoire évalue une céphalosporine dépourvue de groupe méthoxy contre des entérocoques et des anaérobies du tube digestif. Quel profil est attendu ?

Aucune activité sur les entérocoques et forte activité sur les anaérobies
Activité sur les entérocoques et forte activité sur les anaérobies
Activité sur les entérocoques et activité très limitée sur les anaérobies
Aucune activité sur les entérocoques et activité très limitée sur les anaérobies

Aucune activité sur les entérocoques et activité très limitée sur les anaérobies

Explication

Les céphalosporines sont inactives sur les entérocoques et ont une activité très limitée sur les anaérobies du tube digestif, sauf présence d’un groupe méthoxy. L’activité des pénicillines A sur certains entérocoques ne s’applique pas aux céphalosporines; une forte activité anaérobie est également erronée ici.

13. Pour un pneumocoque résistant à la pénicilline (PSDP), quelle comparaison entre les C3G et les C1G est correcte ?

Les C3G ont une activité comparable à celle des C1G
Les C3G sont moins actives que les C1G
Les C3G sont plus actives que les C1G
Les C3G sont inactives tandis que les C1G restent actives

Les C3G sont plus actives que les C1G

Explication

Les C3G sont plus actives que les C1G sur les pneumocoques, y compris les PSDP. L’avantage des C1G concerne les staphylocoques, et l’inactivité des C3G sur les entérocoques ne doit pas être étendue aux pneumocoques.

14. Une infection est due à une bactérie à Gram négatif qui hyperproduit une céphalosporinase et produit aussi une infection à P. aeruginosa. Quel profil du céfépime, une C4G, correspond à ces cibles ?

Forte activité sur les deux cibles
Activité sur la souche hyperproductrice, mais pas sur P. aeruginosa
Activité sur P. aeruginosa, mais pas sur la souche hyperproductrice
Faible activité sur les deux cibles

Forte activité sur les deux cibles

Explication

Le céfépime possède une forte activité sur les bactéries à Gram négatif, y compris celles qui hyperproduisent une céphalosporinase, et il est actif sur P. aeruginosa. La ceftaroline, contrairement au céfépime, est inactive sur P. aeruginosa.

15. Une équipe compare la ceftaroline et le ceftobiprole pour traiter une infection à SARM avec une couverture de P. aeruginosa. Quelle distinction doit guider son choix ?

Seul le ceftobiprole couvre le SARM; son profil à Gram négatif est proche de la ceftazidime
Les deux couvrent le SARM; le ceftobiprole a un profil à Gram négatif proche de la ceftazidime
Les deux couvrent le SARM; la ceftaroline a un profil à Gram négatif proche de la ceftazidime
Seule la ceftaroline couvre le SARM; le ceftobiprole est inactif sur P. aeruginosa

Les deux couvrent le SARM; le ceftobiprole a un profil à Gram négatif proche de la ceftazidime

Explication

La ceftaroline et le ceftobiprole sont actifs sur le SARM, mais le ceftobiprole a un spectre à Gram négatif proche de celui de la ceftazidime, tandis que la ceftaroline est inactive sur P. aeruginosa. L’inversion des profils anti-Pseudomonas est donc incorrecte.

16. Dans une association antibiotique, quel rôle joue l’inhibiteur de bêta-lactamases ?

Il empêche l’entrée de la bêta-lactamine dans la bactérie sans agir sur les enzymes
Il détruit directement les bactéries, tandis que la bêta-lactamine inhibe les enzymes
Il se fixe au site actif des enzymes et les inhibe, avec une activité directe faible ou nulle
Il se fixe au site actif bactérien et assure l’essentiel de l’activité antibiotique

Il se fixe au site actif des enzymes et les inhibe, avec une activité directe faible ou nulle

Explication

Les inhibiteurs se fixent au site actif des bêta-lactamases pour inhiber ces enzymes, mais leur activité antibiotique directe est faible ou nulle. Attribuer l’effet antibactérien principal à l’inhibiteur confond son rôle avec celui de la bêta-lactamine associée.

17. Une bêta-lactamine perd de son activité en présence d’une bactérie productrice de bêta-lactamase. Quel effet vise l’ajout d’un inhibiteur adapté ?

Récupérer la perte d’activité provoquée par la bêta-lactamase
Remplacer l’activité de la bêta-lactamine par celle de l’inhibiteur
Éliminer l’effet de la bêta-lactamine tout en conservant celui de l’inhibiteur
Élargir nécessairement le spectre à toutes les bactéries résistantes

Récupérer la perte d’activité provoquée par la bêta-lactamase

Explication

L’association d’une bêta-lactamine et d’un inhibiteur vise à récupérer la perte d’activité due aux bêta-lactamases. Elle ne signifie ni que l’inhibiteur remplace l’antibiotique principal ni que toutes les résistances sont surmontées.

18. Un isolat produit une BLSE et appartient aux entérobactéries, tandis qu’un second isolat est une EPC. Quel profil du ceftolozane-tazobactam faut-il retenir ?

Inactif sur les deux isolats
Actif sur les deux isolats
Actif sur l’entérobactérie productrice de BLSE, mais inactif sur l’EPC
Inactif sur l’entérobactérie productrice de BLSE, mais actif sur l’EPC

Actif sur l’entérobactérie productrice de BLSE, mais inactif sur l’EPC

Explication

Le ceftolozane associé au tazobactam est actif sur les entérobactéries productrices de BLSE, mais inactif sur les EPC. L’activité sur certaines EPC concerne plutôt la ceftazidime associée à l’avibactam.

19. Une souche de P. aeruginosa et une entérobactérie productrice de KPC sont isolées chez un patient. Quel profil correspond à la ceftazidime-avibactam ?

Activité sur P. aeruginosa et sur certaines EPC de type KPC
Activité sur les EPC de type KPC, mais pas sur P. aeruginosa
Absence d’activité sur P. aeruginosa et sur les EPC de type KPC
Activité sur P. aeruginosa, mais pas sur les EPC de type KPC

Activité sur P. aeruginosa et sur certaines EPC de type KPC

Explication

La ceftazidime-avibactam est active sur P. aeruginosa et sur certaines EPC, notamment celles de type KPC et OXA-48. L’inactivité sur les EPC est attribuée au ceftolozane-tazobactam, et non à cette association.

20. Une infection due à Pseudomonas nécessite un traitement injectable couvrant les bacilles Gram négatif, mais le foyer contient aussi des anaérobies. Quelle caractéristique de l’aztréonam faut-il prendre en compte ?

Il couvre les anaérobies et les Gram positif, mais pas Pseudomonas.
Il couvre les Gram positif et Pseudomonas, mais pas les anaérobies.
Il couvre les Gram négatif et les anaérobies, notamment Pseudomonas.
Il couvre les Gram négatif, notamment Pseudomonas, mais pas les anaérobies.

Il couvre les Gram négatif, notamment Pseudomonas, mais pas les anaérobies.

Explication

L’aztréonam est un monobactame injectable actif contre les Gram négatif, avec un intérêt contre Pseudomonas, mais il est inactif sur les anaérobies. Lui attribuer une activité anaérobie confond son spectre avec celui des carbapénèmes.

21. Un antibiotique glycopeptidique empêche la dernière étape de formation du peptidoglycane en se liant à un motif de ses précurseurs. À quel motif se fixe-t-il ?

À l’ARN polymérase.
Au motif D-Ala-D-Lac.
Au motif D-Ala-D-Ala.
À la membrane cytoplasmique.

Au motif D-Ala-D-Ala.

Explication

Les glycopeptides inhibent la phase finale de synthèse du peptidoglycane en se fixant au D-Ala-D-Ala. Le D-Ala-D-Lac correspond à une modification de cible, tandis que la membrane et l’ARN polymérase sont des cibles d’autres mécanismes.

22. Un patient présente une infection à SARM, tandis qu’un autre a une infection à SASM. Quelle comparaison décrit correctement l’activité des glycopeptides dans ces situations ?

Ils sont actifs sur le SARM, mais la vancomycine est moins active que la cloxacilline sur le SASM.
Ils sont actifs sur le SARM, et la vancomycine est plus active que la cloxacilline sur le SASM.
Ils sont actifs sur le SARM et sur les Gram négatif naturellement sensibles.
Ils sont inactifs sur le SARM, mais actifs sur le SASM comme la cloxacilline.

Ils sont actifs sur le SARM, mais la vancomycine est moins active que la cloxacilline sur le SASM.

Explication

Les glycopeptides ciblent les bactéries Gram positif et sont actifs sur le SARM; les Gram négatif leur sont naturellement résistants. Pour le SASM, la vancomycine est moins active que la cloxacilline : l’affirmation d’une activité supérieure inverse cette comparaison.

23. Après exposition à la daptomycine, une bactérie présente une fuite de potassium et cesse de synthétiser ADN, ARN et protéines. Quel mécanisme relie ces observations ?

L’inhibition de l’ARN polymérase entraîne une fuite de K+ et l’arrêt des synthèses cellulaires.
La dépolarisation de la membrane entraîne une fuite de K+ et l’arrêt des synthèses cellulaires.
L’hyperpolarisation de la membrane entraîne une fuite de K+ et l’arrêt des synthèses cellulaires.
L’inhibition du peptidoglycane entraîne une fuite de K+ et l’arrêt des synthèses cellulaires.

La dépolarisation de la membrane entraîne une fuite de K+ et l’arrêt des synthèses cellulaires.

Explication

La daptomycine dépolarise la membrane bactérienne, ce qui provoque une fuite de K+ puis l’arrêt des synthèses d’ADN, d’ARN et de protéines. L’inhibition du peptidoglycane et celle de l’ARN polymérase sont d’autres mécanismes, et une hyperpolarisation inverse le mécanisme décrit.

24. Un antibiotique de la famille des ansamycines bloque l’ARN polymérase bactérienne. Quelle étape de l’expression génétique est alors inhibée ?

La synthèse du peptidoglycane
La réplication de l’ADN bactérien
La transcription de l’ADN en ARN
La traduction de l’ARN en protéines

La transcription de l’ADN en ARN

Explication

L’ARN polymérase réalise la transcription, et son inhibition bloque donc la production d’ARN. La réplication concerne la copie de l’ADN, la traduction produit des protéines et le peptidoglycane forme la paroi.

25. Dans une bactérie anaérobie exposée à un 5-nitro-imidazolé, quelle séquence explique l’endommagement de son ADN ?

Oxydation du groupement NO2, puis blocage de la traduction et arrêt de croissance
Inhibition de l’ARN polymérase, puis arrêt de la transcription et dégradation de l’ADN
Réduction du groupement NO2, puis fixation d’espèces réactives à l’ADN et cassures
Fixation à la gyrase, puis stabilisation de l’ADN et arrêt de sa réplication

Réduction du groupement NO2, puis fixation d’espèces réactives à l’ADN et cassures

Explication

Les 5-nitro-imidazolés doivent être réduits pour former des espèces réactives qui se fixent à l’ADN et provoquent des cassures. L’oxydation, l’inhibition de l’ARN polymérase et le ciblage de la gyrase correspondent à des mécanismes différents.

26. Une quinolone forme un complexe ternaire avec l’ADN et une topoisomérase bactérienne. Quelle conséquence directe ce complexe entraîne-t-il ?

La synthèse des protéines est bloquée au niveau des ribosomes
La transcription de l’ADN en ARN est directement interrompue
La coupure du brin d’ADN ne peut pas être réparée
La membrane bactérienne est dépolarisée et perd ses ions

La coupure du brin d’ADN ne peut pas être réparée

Explication

Le complexe formé par la quinolone, l’ADN et la topoisomérase empêche la réparation de la coupure du brin d’ADN. L’arrêt de la transcription, le blocage des ribosomes et la dépolarisation membranaire relèvent d’autres mécanismes.

27. En laboratoire, on observe qu’un antibiotique empêche la synthèse protéique en agissant sur la sous-unité 30S et qu’il tue les bactéries. À quelle classe correspond ce profil ?

Aux quinolones
Aux tétracyclines
Aux aminosides
Aux macrolides

Aux aminosides

Explication

Les aminosides inhibent la sous-unité 30S, bloquent la synthèse protéique et sont bactéricides. La sous-unité 50S et l’effet bactériostatique caractérisent notamment les macrolides, tandis que les quinolones ciblent la synthèse des acides nucléiques.

28. Un antibiotique inhibe l’ARN ribosomal 23S de la sous-unité 50S et présente un effet post-antibiotique. Quel profil lui correspond ?

Un profil d’aminoside bactéricide
Un profil de macrolide bactériostatique
Un profil de tétracycline bactériostatique
Un profil de quinolone bactéricide

Un profil de macrolide bactériostatique

Explication

Les macrolides agissent sur la sous-unité 50S, notamment sur l’ARNr 23S, et sont bactériostatiques avec un effet post-antibiotique. Les aminosides ciblent la 30S et sont bactéricides; les deux autres profils proposés ne correspondent pas à cette association de caractéristiques.

29. Un antibiotique bloque la phase d’élongation de la synthèse protéique en se fixant à la sous-unité 30S. À quelles familles correspond ce mécanisme ?

Aux aminosides et aux oxazolidinones
Aux macrolides et aux glycylcyclines
Aux tétracyclines et aux glycylcyclines
Aux oxazolidinones et aux macrolides

Aux tétracyclines et aux glycylcyclines

Explication

Les tétracyclines et les glycylcyclines inhibent l’élongation en se fixant à la sous-unité 30S. Les oxazolidinones empêchent précocement la formation du complexe initiateur au niveau de la 50S; les macrolides agissent également sur la 50S.

30. Un composé inhibe très tôt la synthèse protéique en empêchant la formation du complexe initiateur au niveau de la sous-unité 50S. Quelle classe présente ce mécanisme ?

Les tétracyclines
Les macrolides
Les quinolones
Les oxazolidinones

Les oxazolidinones

Explication

Les oxazolidinones inhibent précocement la synthèse protéique en empêchant la formation du complexe initiateur au niveau de la sous-unité 50S et du centre peptidyltransférase. Les tétracyclines agissent sur l’élongation à la 30S, tandis que les quinolones ciblent les acides nucléiques.

31. En examinant le peptidoglycane d’une bactérie, quelle organisation moléculaire faut-il identifier ?

Un squelette alternant N-acétylglucosamine et acide N-acétylmuramique, portant des tétrapeptides liés au muramique et reliés par des ponts de composition identique
Un squelette alternant N-acétylglucosamine et acide N-acétylmuramique, portant des tétrapeptides liés à la glucosamine et reliés par des ponts variables
Un squelette alternant N-acétylglucosamine et acide N-acétylmuramique, portant des tétrapeptides liés au muramique et reliés directement ou par des ponts variables
Un squelette composé uniquement de tétrapeptides, auquel sont attachés les sucres N-acétylglucosamine et N-acétylmuramique

Un squelette alternant N-acétylglucosamine et acide N-acétylmuramique, portant des tétrapeptides liés au muramique et reliés directement ou par des ponts variables

Explication

Le peptidoglycane associe un squelette de sucres alternés à des chaînes tétrapeptidiques fixées à l’acide N-acétylmuramique; les liaisons entre chaînes peuvent être directes ou comporter des ponts variables selon l’espèce. L’attachement à la glucosamine confond le point d’ancrage, tandis que des ponts identiques ignorent leur variation.

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Quels facteurs contribuent à la sélection de résistances bactériennes ?

Les échanges génétiques, la pression antibiotique et la transmission croisée.

Qu’est-ce que le peptidoglycane bactérien ?

Un polymère complexe qui donne sa forme et sa structure à chaque espèce bactérienne.

Combien de feuillets de peptidoglycane possèdent les bactéries à Gram positif ?

Jusqu’à 40 feuillets.

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